Содержание
Растения на букву «Л»
Лабазник — Растения для водоемов
Лабазник — Травянистые растения для открытого грунта
Лабазник вязолистный — Травянистые растения для открытого грунта
Лабазник дланевидный — Травянистые растения для открытого грунта
Лабазник камчатский — Травянистые растения для открытого грунта
Лабазник красный — Травянистые растения для открытого грунта
Лабазник обыкновенный — Травянистые растения для открытого грунта
Лабазник пурпурный — Травянистые растения для открытого грунта
Лабазник шестилепестный — Травянистые растения для открытого грунта
Лаванда — Овощные культуры
Лаванда — Травянистые растения для открытого грунта
Лаванда английская — Травянистые растения для открытого грунта
Лаванда настоящая — Травянистые растения для открытого грунта
Лаванда узколистная — Травянистые растения для открытого грунта
Лаватера — Травянистые растения для открытого грунта
Лаватера трехмесячная — Травянистые растения для открытого грунта
Лавенда — Овощные культуры
Лавр — Комнатные растения
Лавр благородный — Комнатные растения
Лавровишня — Декоративные деревья и кустарники
Лавровишня аптечная — Декоративные деревья и кустарники
Лавровишня лекарственная — Декоративные деревья и кустарники
Лавровишня обыкновенная — Декоративные деревья и кустарники
Лагенария — Лианы
Лагенария — Овощные культуры
Лагенария обыкновенная — Лианы
Ладан — Травянистые растения для открытого грунта
Ладанка — Овощные культуры
Ладонник — Травянистые растения для открытого грунта
Лаконос американский — Травянистые растения для открытого грунта
Лакфиоль — Травянистые растения для открытого грунта
Ландыш — Травянистые растения для открытого грунта
Ландыш майский — Травянистые растения для открытого грунта
Ландышевое дерево — Декоративные деревья и кустарники
Ландышник — Комнатные растения
Ландышник — Травянистые растения для открытого грунта
Лантана — Комнатные растения
Лантана сводчатая — Комнатные растения
Лантана шиповатая — Комнатные растения
Лапа волчья — Растения для водоемов
Лапчатка — Травянистые растения для открытого грунта
Лапчатка болотная — Растения для водоемов
Лапчатка гибридная — Травянистые растения для открытого грунта
Лапчатка даурская — Декоративные деревья и кустарники
Лапчатка кустарниковая — Декоративные деревья и кустарники
Лапчатка непальская — Травянистые растения для открытого грунта
Латания — Комнатные растения
Латания Лодигеза — Комнатные растения
Латук посевной — Овощные культуры
Латунные пуговицы — Травянистые растения для открытого грунта
Лаурентия — Травянистые растения для открытого грунта
Лаурентия гибридная — Травянистые растения для открытого грунта
Лебеда лоснящаяся — Овощные культуры
Лебеда овощная — Овощные культуры
Лебеда садовая — Овощные культуры
Лебеда шпинатная — Овощные культуры
Лебюшка — Овощные культуры
Левкой — Травянистые растения для открытого грунта
Легочница — Травянистые растения для открытого грунта
Ледебурия — Комнатные растения
Ледебурия общественная — Комнатные растения
Ледебурия объединенная — Комнатные растения
Леея — Комнатные растения
Леея ярко-красная — Комнатные растения
Лейхтенбергия — Комнатные растения
Лейхтенбергия княжеская — Комнатные растения
Лейхтенбергия превосходная — Комнатные растения
Лейхтенбергия принципис — Комнатные растения
Лейцестерия — Декоративные деревья и кустарники
Лейцестерия красивая — Декоративные деревья и кустарники
Лейцестерия прекрасная — Декоративные деревья и кустарники
Лелия — Комнатные растения
Лелия обоюдоострая — Комнатные растения
Лемонграсс — Овощные культуры
Лен — Травянистые растения для открытого грунта
Лен крупноцветковый — Травянистые растения для открытого грунта
Лен многолетний — Травянистые растения для открытого грунта
Лен посевной — Травянистые растения для открытого грунта
Леписмиум — Комнатные растения
Леписмиум круциформе — Комнатные растения
Лещина — Декоративные деревья и кустарники
Лещина древовидная — Декоративные деревья и кустарники
Лещина крупная — Декоративные деревья и кустарники
Лещина крупная — Плодовые и ягодные культуры
Лещина обыкновенная — Декоративные деревья и кустарники
Лещина обыкновенная — Плодовые и ягодные культуры
Лжеакация — Декоративные деревья и кустарники
Лжетсуга — Декоративные деревья и кустарники
Лжетсуга Мензиса — Декоративные деревья и кустарники
Лиатрис — Травянистые растения для открытого грунта
Лиатрис колосковая — Травянистые растения для открытого грунта
Ливистона — Комнатные растения
Ливистона южная — Комнатные растения
Лигодиум — Комнатные растения
Лигодиум японский — Комнатные растения
Лизимахия — Травянистые растения для открытого грунта
Лизихитон — Растения для водоемов
Лизихитон американский — Растения для водоемов
Лизихитон камчатский — Растения для водоемов
Ликаста — Комнатные растения
Ликасте — Комнатные растения
Ликасте ароматная — Комнатные растения
Ликуала — Комнатные растения
Ликуала большая — Комнатные растения
Ликуала крупная — Комнатные растения
Лилейник — Растения для водоемов
Лилейник — Травянистые растения для открытого грунта
Лилейник Миддендорфа — Травянистые растения для открытого грунта
Лилейник буро-желтый — Травянистые растения для открытого грунта
Лилейник гибридный — Травянистые растения для открытого грунта
Лилейник желтый — Травянистые растения для открытого грунта
Лилейник лимонно-желтый — Травянистые растения для открытого грунта
Лилейник рыжий — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия белая — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия белоснежная — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия даурская — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия королевская — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия кудреватая — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия ланцетолистная — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия садовая — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия тигровая — Травянистые растения для открытого грунта
Лилия царственная — Травянистые растения для открытого грунта
Лимнантемум кувшинковидный — Растения для водоемов
Лимнантес — Травянистые растения для открытого грунта
Лимнантес Дугласа — Травянистые растения для открытого грунта
Лимон — Комнатные растения
Лимониум — Травянистые растения для открытого грунта
Лимонная бакопа — Растения для водоемов
Лимонная трава — Овощные культуры
Лимонник — Лианы
Лимонник — Плодовые и ягодные культуры
Лимонник китайский — Лианы
Лимонник маньчжурский — Лианы
Лимонник маньчжурский — Плодовые и ягодные культуры
Лимонное сорго — Овощные культуры
Лимонный водяной иссоп — Растения для водоемов
Лимонный душок — Овощные культуры
Линкольнширский шпинат — Овощные культуры
Липа — Декоративные деревья и кустарники
Липа американская — Декоративные деревья и кустарники
Липа войлочная — Декоративные деревья и кустарники
Липа голландская — Декоративные деревья и кустарники
Липа зеленая — Декоративные деревья и кустарники
Липа крупнолистная — Декоративные деревья и кустарники
Липа крымская — Декоративные деревья и кустарники
Липа мелколистная — Декоративные деревья и кустарники
Липа обыкновенная — Декоративные деревья и кустарники
Липа плосколистная — Декоративные деревья и кустарники
Липа сердцевидная — Декоративные деревья и кустарники
Липа серебристая — Декоративные деревья и кустарники
Липа темно-зеленая — Декоративные деревья и кустарники
Липа черная — Декоративные деревья и кустарники
Липа широколистная — Декоративные деревья и кустарники
Лириопе — Комнатные растения
Лириопе мускари — Комнатные растения
Лисий или Кошачий хвост — Комнатные растения
Лиственница — Декоративные деревья и кустарники
Лиственница Кемпфера — Декоративные деревья и кустарники
Лиственница европейская — Декоративные деревья и кустарники
Лиственница опадающая — Декоративные деревья и кустарники
Лиственница тонкочешуйчатая — Декоративные деревья и кустарники
Лиственница японская — Декоративные деревья и кустарники
Лиственные деревья и кустарники — Декоративные деревья и кустарники
Листовик — Комнатные растения
Листовик — Травянистые растения для открытого грунта
Листовик обыкновенный — Травянистые растения для открытого грунта
Листовик сколопендровый — Комнатные растения
Листовик сколопендровый — Травянистые растения для открытого грунта
Листовик японский — Травянистые растения для открытого грунта
Литопс — Комнатные растения
Литопс ложноусеченный — Комнатные растения
Лихнис — Травянистые растения для открытого грунта
Лихнис Хааге — Травянистые растения для открытого грунта
Лихнис корончатый — Травянистые растения для открытого грунта
Лихнис халцедонский — Травянистые растения для открытого грунта
Лихорадочник — Растения для водоемов
Лиций — Декоративные деревья и кустарники
Лиций обыкновенный — Декоративные деревья и кустарники
Лоба — Овощные культуры
Лобелия — Травянистые растения для открытого грунта
Лобелия Жерарда — Травянистые растения для открытого грунта
Лобелия ежевидная — Травянистые растения для открытого грунта
Лобелия эринус — Травянистые растения для открытого грунта
Лобо — Овощные культуры
Лобулярия — Травянистые растения для открытого грунта
Лобулярия морская — Травянистые растения для открытого грунта
Ложная акация — Декоративные деревья и кустарники
Ложный плющ — Комнатные растения
Лозинка обыкновенная — Декоративные деревья и кустарники
Лозинка обыкновенная — Лианы
Ломбардский орех — Декоративные деревья и кустарники
Ломбардский орех — Плодовые и ягодные культуры
Ломонос — Декоративные деревья и кустарники
Ломонос — Лианы
Ломонос виргинский — Лианы
Ломонос жгучий — Лианы
Ломонос метельчатый — Лианы
Ломонос тангутский — Лианы
Ломонос фиолетовый — Лианы
Ломонос цельнолистный — Декоративные деревья и кустарники
Лопух большой — Овощные культуры
Лотос — Растения для водоемов
Лотос индийский — Растения для водоемов
Лотос орехоносный — Растения для водоемов
Лофант — Овощные культуры
Лофофора — Комнатные растения
Лофофора Вильямса — Комнатные растения
Лох — Декоративные деревья и кустарники
Лох колючий — Декоративные деревья и кустарники
Лох серебристый — Декоративные деревья и кустарники
Лох смешиваемый — Декоративные деревья и кустарники
Лох узколистный — Декоративные деревья и кустарники
Лохнера — Комнатные растения
Луговой чай — Травянистые растения для открытого грунта
Лудизия — Комнатные растения
Лудизия бесцветная — Комнатные растения
Лудизия двуцветная — Комнатные растения
Луизеания трехлопастная — Декоративные деревья и кустарники
Лук — Овощные культуры
Лук — Овощные культуры
Лук — Травянистые растения для открытого грунта
Лук Аскалона — Овощные культуры
Лук Кристофа — Травянистые растения для открытого грунта
Лук Моли — Травянистые растения для открытого грунта
Лук Моля — Травянистые растения для открытого грунта
Лук Островского — Травянистые растения для открытого грунта
Лук Розенбаха — Травянистые растения для открытого грунта
Лук Суворова — Овощные культуры
Лук Христофа — Травянистые растения для открытого грунта
Лук Шуберта — Травянистые растения для открытого грунта
Лук алтайский — Овощные культуры
Лук анзур — Овощные культуры
Лук афлатунский — Травянистые растения для открытого грунта
Лук батун — Овощные культуры
Лук беловолосистый — Травянистые растения для открытого грунта
Лук ветвистый — Овощные культуры
Лук высочайший — Овощные культуры
Лук гигантский — Овощные культуры
Лук гигантский — Травянистые растения для открытого грунта
Лук голубой — Травянистые растения для открытого грунта
Лук горолюбивый — Травянистые растения для открытого грунта
Лук дикий — Овощные культуры
Лук дудчатый — Овощные культуры
Лук душистый — Овощные культуры
Лук египетский — Овощные культуры
Лук жемчужный — Овощные культуры
Лук живородящий — Овощные культуры
Лук золотистый — Травянистые растения для открытого грунта
Лук золотой — Травянистые растения для открытого грунта
Лук каменный — Овощные культуры
Лук каменный — Овощные культуры
Лук каратавский — Травянистые растения для открытого грунта
Лук медвежий — Овощные культуры
Лук медвежий — Травянистые растения для открытого грунта
Лук многоярусный — Овощные культуры
Лук неаполитанский — Травянистые растения для открытого грунта
Лук победный — Травянистые растения для открытого грунта
Лук победоносный — Травянистые растения для открытого грунта
Лук поникающий — Овощные культуры
Лук порей — Овощные культуры
Лук репчатый — Овощные культуры
Лук рогатый — Овощные культуры
Лук сибирский — Овощные культуры
Лук сибирский — Травянистые растения для открытого грунта
Лук скорода — Травянистые растения для открытого грунта
Лук слизун — Овощные культуры
Лук староверов — Овощные культуры
Лук стебельчатый — Овощные культуры
Лук татарский — Овощные культуры
Лук шалот — Овощные культуры
Луковичные культуры — Овощные культуры
Лума — Комнатные растения
Лума остроконечная — Комнатные растения
Лунник — Травянистые растения для открытого грунта
Лунник оживающий — Травянистые растения для открытого грунта
Луносемянник — Лианы
Луносемянник даурский — Лианы
Луносемянник канадский — Лианы
Луноцвет — Лианы
Луноцвет шиповатый — Лианы
Львиный зев — Травянистые растения для открытого грунта
Любисток — Овощные культуры
Людизия — Комнатные растения
Людисия — Комнатные растения
Людисия разноцветная — Комнатные растения
Люма — Комнатные растения
Люма остроконечная — Комнатные растения
Люпин — Травянистые растения для открытого грунта
Люпин гибридный — Травянистые растения для открытого грунта
Люпин многолистный — Травянистые растения для открытого грунта
Лютик — Растения для водоемов
Лютик — Травянистые растения для открытого грунта
Лютик азиатский — Травянистые растения для открытого грунта
Лютик длиннолистный — Растения для водоемов
Лютик длиннолистный — Травянистые растения для открытого грунта
Лютик садовый — Травянистые растения для открытого грунта
Люффа — Овощные культуры
Лягушатник. Водяная змейка — Растения для водоемов
Лягушечник — Растения для водоемов
Полезный – не полезный. Какие лекарственные травы можно собирать самим? | ЗДОРОВЬЕ: Медицина | ЗДОРОВЬЕ
Лето — самое время для сбора витаминов на зиму: заморозить ягоды, наварить варенья, заготовить овощи. Также некоторые собирают лекарственные травы, об их пользе наслышаны, но на первый взгляд безобидные зверобой, крапива могут принести и вред здоровью. Корреспондент «АиФ — Тюмень» София Балдина узнала, стоит ли со справочником в руках отправляться на сбор полезных трав.
Когда собирать
Травы и цветы собирают в начале цветения — листья и трава — в начале и во время цветения — почки и кора — в весенний период, а именно: с марта по май — корни и корневища собирать надо осенью или ранней весной. Плоды собирают совершенно зрелыми — правда, те плоды, которые при созревании быстро осыпаются, лучше собирать до начала созревания.
Как долго хранить
Цветки, травы и листья можно хранить в среднем два года, плоды — три года, а корни, корневища и кору — до пяти лет.
Где собирать
Собирать лекарственные растения для сушки или пересадки можно только в экологически чистых зонах — полях и лесах, находящихся как можно дальше от проезжей части. Нельзя собирать травы в городских парках, они скорее принесут вред, чем пользу.
Правила сбора
Собирать травы нужно только в сухую погоду. При тумане, росе и дожде сбор лучше отменить. Сбор всех частей растений делают в дневное время (с 8-9 утра до 16-17 часов). Собранные травы сразу складываем в мешки или что-то подобное (не кульки), только туго набивать нельзя.
Надземную часть растений при заготовке срезают или скашивают на уровне нижних листьев. У рослых растений с толстым, грубым стеблем (полынь, пустырник и другие) собирают только верхние части стебля (до 15-20 см) и боковые побеги.
Цветки и соцветия собирают, срезая ножницами или аккуратно отщипывая цветоножки. Это очень нежное сырье, поэтому для сбора рекомендуют использовать корзинки, в которые рыхлым слоем, не сминая, кладут цветки.
Семена и плоды собирают выборочно, поскольку созревают они обычно неравномерно. Осыпающиеся семена (например, аниса, кориандра, тмина и других растений) можно заготавливать, срезая верхушки растений с недозрелыми семенами — их связывают в пучки и подвешивают для дозаривания, а затем обмолачивают. Сочные ягоды (земляника, смородина, черника и другие) собирают осторожно, перекладывая каждый слой ягод (не толще 5-7 см) слоем листьев, чтобы сырье не слеживалось — помятые ягоды при сушке портятся, загнивают или покрываются плесенью.
Подземные части растений (корни, корневища, клубни и луковицы) выкапывают вилами или лопатой вместе с почвой, а затем, отряхнув землю, промывают в холодной проточной воде. Промытое сырье раскладывают, чтобы слегка подсушить, а затем очищают от мусора, поврежденных частей, мелких корешков. Нельзя мыть подземные части растений, содержащие слизистые вещества и сапонины (ятрышник, синюха и другие) — землю с них тщательно отряхивают и снимают с корней (клубней, корневищ) верхнюю кожицу.
Сушим по правилам
Для качества лекарственных растений огромное значение имеет их правильная сушка. Поэтому растения надо сушить в хорошо проветриваемых помещениях или на воздухе в тени при температуре 30-40°С. А вот душистые травы — такие, как чабрец (тимьян обыкновенный) и душица обыкновенная, обязательно сушатся медленно и при температуре не выше 30-35°С.
Как хранить
Собранные травы, листья и цветы, разрыхляя их слои, укладываем в чистые и сухие корзины или ящики. Нельзя хранить травы в полиэтиленовых пакетах, их полезные свойства быстро улетучиваются.
ТОП 5 растений, которые уверенно можно собирать самим
- Облепиха. Полезные свойства этого растения содержатся не только в ягодах, но и в листьях растения. Их часто применяют в лечебных, косметических целях. Растение способствует восстановлению здоровья кожи, волос, улучшает работу печени и поджелудочной железы, снимает сезонные простудные воспаления.
- Шиповник, главная польза которого — изобилие витаминов. Помимо аскорбиновой кислоты, в дикой розе, как ее называют, содержатся ретинол, витамины B2, K, P, E. Состав растения богат на биофлавониннды, органические кислоты, дубильные вещества. Это делает растение незаменимым в косметологии.
- Малина — проверенное лекарство при простудных заболеваниях. Чай с малиной помогает избавиться от простуды, наряду с липовым и клюквенным чаем. Ягоды малины в народной медицине зарекомендовали себя как отличное жаропонижающее средство. За счет содержания в ягодах салициловой кислоты малина является потогонным средством.
- Смородина. Ягоды черной смородины содержат витамины В, Р, провитамин А (каротин до 3 мг%), сахара, пектиновые вещества, фосфорную кислоту, эфирное масло, дубильные вещества, витамин группы К, каротин, она богата солями калия, содержит соли фосфора и железа. Листья содержат фитонциды, магний, марганец, серу, серебро, медь, свинец, эфирное масло и витамин С (250 мг%). Что касается витамина С, то здесь черная смородина — лидер среди других растений.
- Мята. Содержит эфирное масло, флавоноиды, дубильные вещества и многие полезные компоненты. Важным источником в составе травы можно назвать ментол, который оказывает легкое местное анестезирующее действие. В свежих листьях ментола больше, но масла меньше. Мятное масло применяется при заболевании печени, желчного пузыря, выводятся из организма вредные радикалы, снижается уровень холестерина в крови.
ТОП 5 растений, которые лучше обходить стороной
- Донник лекарственный — при длительном употреблении вызывает головокружение, головную боль, тошноту, рвоту, сонливое состояние, иногда поражение печени, кровоизлияния (под кожу, в мышцы, внутренние органы) и даже паралич центральной нервной системы.
- Пижма обыкновенная — ядовитое растение. Принимать внутрь следует с большой осторожностью.
- Чистотел большой — ядовиты все части растения, в особенности корни. Принимать внутрь препараты чистотела следует только по назначению и под контролем врача.
- Тысячелистник — при приеме всех видов тысячелистника требуется осторожность. Длительный прием и передозировка препаратов тысячелистника могут вызывать головокружения и кожные сыпи.
- Дурман обыкновенный — содержит алкалоиды, поэтому при приеме необходимы точное соблюдение дозировки и врачебный контроль. При глаукоме прием препаратов этого растения противопоказан.
Комментарий специалиста
Профессор кафедры биохимии, доктор биологических наук Ральченко Ирина Викторовна:
— Не нужно собирать все лекарственные травы, какие есть, — это очень опасно. Вообще сбором лекарственных трав должны заниматься специалисты. Их ведь важно не только правильно собрать, но и изготовить, просушить — это целая система знаний. Незнающему человеку легко спутать полезные травы с неполезными, а то и ядовитыми. Например, душицу можно спутать с чабрецом, они очень похожи, а действия у них разные. Даже той же ромашки несколько видов и не все полезные, подорожника несколько видов, хотя используется только один.
Помимо явно опасных трав не стоит забывать и о том, что даже у полезных растений есть побочный эффект. Например, крапива приводит к образованию тромбов, зверобой — вызывает аллергию даже у животных. Кстати, многие полезные травы — аллергены, поэтому принимать их нужно с осторожностью. Вообще полезные растения всегда идут в качестве дополнительного лечения и принимаются строго по назначению врача, самостоятельно «выписывать» их себе опасно. Тем, кто плохо разбирается в травах, лучше собирать полезные растения ягодной формы: облепиху, малину, смородину, шиповник — в них тоже множество полезных свойств, а растут они у многих на дачных участках.
Список-каталог растений на букву «Л»
Л
Лабурнум (Бобовник)
(лат. Laburnum)
На зиму деревья и кусты сбрасывают листья. Желтые цветки мотылькового типа собраны в безлистные повисающие или прямостоящие кисти.
Лаванда
(лат. Lavandula)
Родиной лаванды считают средиземноморское побережье, что говорит о ее теплолюбивости. На сегодняшний день известно около 30 видов, но наиболее популярны из них только три.
Лавр
(лат. Laurus)
Лавр — двудомный вечнозеленый кустарник или большое дерево, достигающее 18 м высотой с гладкой бурой или темно-серой корой и густой кроной пирамидальной формы.
Лавр благородный
(лат. Laurus nobilis)
Лантана
(лат. Lantana)
Род Лантана или по-латыни Lantana, включающий в себя порядка 150 видов, происходит из семейства вербеновых. Родиной лантаны справедливо считается тропическая Америка, откуда она и распространилась по всему миру.
Лантана шиповатая (Лантана сводчатая)
(лат. Lantana camara)
Латания
(лат. Latania)
Самым распространенным видом в культурном садоводстве является Латания Лодзигеза (лат. Latania loddigesii)
Латания Лодигеза
(лат. Latania loddigesii)
Ледебурия
(лат. Ledebouria)
Однако ледебурия совершенно спокойно перенесет и полное отсутствие удобрений, довольствуясь солями, имеющимися в почве или поступающими с водой при поливе.
Левизия
(лат. Lewisia)
В семействе портулаковые (лат. Portulacaceae) есть прекрасное многолетнее растение, которое используют для украшения альпийских горок.
Ледебурия общественная (Ледебурия объединенная, Сцилла фиолетовая)
(лат. Ledebouria socialis)
Леея
(лат. Leea)
Леэя декоративно-лиственный кустарник, который относится к семейству Леиевых (лат. Leeiaceae).
Леея ярко-красная
(лат. Leea coccinea)
Лейхтенбергия
(лат. Leuchtenbergia)
Лейхтенбергия относится к семейству Кактусовые (лат. Cactaceae). Этот род является монотипным и прибыл к нам из далекой Мексики.
Лейхтенбергия княжеская (Лейхтенбергия превосходная, Принципис)
(лат. Leuchtenbergia principis)
Лелия
(лат. Laelia)
Лелия обоюдоострая
(лат. Laelia anceps)
Леписмиум
(лат. Lepismium)
Правильный уход позволяет успешно выращивать леписмиум в обычном горшке в комнатных условиях. Растение неприхотливо, может довольствоваться небольшим количеством грунта.
Леписмиум круциформе
(лат. Lepismium cruciforme)
Род Леписмиум (лат. Lepismium) представляет собой растения суккуленты, которые относятся к семейству Кактусовых (лат. Cactaceae). Этот кактус ведет эпифитный образ жизни и это значит, что в природе он с удовольствием произрастает в дуплах взрослых деревьев или в местах с большим нагромождением коры, древесных опилок.
Лептоспермум (Манука)
(лат. Leptospermum)
Лептоспермум состоит в семействе Миртовые (лат. Myrtaceae) и являет собой сильноветвящийся изящный кустарник.
Леспедеца двухцветная
(лат. Lespedeza bicolor)
Леспедеца двухцветная (лат. Lespedeza bicolor) относится к семейству Бобовых (лат. Fabaceae) и представляет собой высокорослый многолетний кустарник.
Ливистона
(лат. Livistona)
Ливистона (латания) – вечнозеленое быстрорастущее растение. В природных условиях вырастает до тридцати метров. Пальма, посаженная в горшок – достигает 2-3 метра в высоту.
Ливистона южная
(лат. Livistona australis)
Лигодиум
(лат. Lygodium)
Лигодиум (лат. Lygodium) входит в семейство Схизейные (лат. Schizaceae). Это растение относится к папоротникам и обладает очень декоративной перисторассеченной листвой. Как и у многих представителей папоротников листья или вайи лигодиума разделяются на стерильные и спороносные.
Лигодиум японский
(лат. Lygodium japonicum)
Ликаста (Ликасте)
(лат. Lycaste)
В род Ликаста входит около 50 видов орхидей с симподиальным типом ветвления. Это значит, что рост верхушки главной оси современем прекращается и уступает место боковой ветви, которая растет в направлении той же оси.
Ликасте ароматная
(лат. Lycaste aromatica)
Ликуала
(лат. Licuala)
Род Ликуала (лат. Licuala) объединяет около 140 видов различных пальм. Он относится к очень большому семейству Арековых (лат. Arecaceae, или Palmae).
Ликуала большая (Ликуала крупная)
(лат. Licuala grandis)
Лимон
(лат. Citrus limon)
Подходящие для выращивания в комнатных условиях, но редко встречающиеся сорта лимона: пестролистный Эврика (с белыми прожилками на листьях), Курский и Дженоа – оба с очень вкусными плодами, Майкопский (самый урожайный), Виллафранка, Новогрузинский.
Лириопе
(лат. Liriope)
Лириопе мускари
(лат. Liriope muscari)
Лисий хвост (Кошачий хвост, Акалифа)
(лат. Acalypha)
Уход за акалифой в домашних условиях предполагает создание комплекса условий, для ее комфортного произрастания в вашем саду. Для этого нужно подобрать необходимое освещение, влажность, температуру, подобрать подкормки, чтобы на окне красовался пестрый лисий хвост.
Листовик
(лат. Phyllitis)
Листовик представитель семейства Асплениевых (лат. Aspleniaceae). Это многолетние травянистые папоротники, которые представлены десятью видами.
Листовик сколопендровый
(лат. Phyllitis scolopendrium)
Литопс
(лат. Lithops)
Каждый экземпляр литопса представляет собой пару сросшихся объёмных мясистых листа высотой лишь 2-5 см, которые между собой разделены ложбинкой. Верхняя поверхность листьев, в зависимости от вида, может быть плоской, выпуклой или конической.
Литопс кеглевидный
(лат. Lithops turbiniformis)
Литопс ложноусеченный
(лат. Lithops pseudotruncatella)
Лофофора (Пейотл)
(лат. Lophophora)
В культуре комнатного садоводства лофофора — очень стойкий кактус. Этот вид хорошо приживается на собственных корнях.
Лофофора Уильямса
(лат. Lophophora williamsii)
Лудизия (Людизия, Людисия, Гемария)
(лат. Ludisia)
Грунт для лудизии необходим легкий, хорошо пропускающий воздух. Первый вариант подходящего состава – измельченный свежий сфагнум, торф, древесный уголь, листовая почва, сосновые иголки.
Лудизия бесцветная (Гемария разноцветная, Лудизия двуцветная)
(лат. Ludisia discolor)
Лума (Люма)
(лат. Luma)
Лума (лат. Luma), или люма пришла к нам из Южной Америки. Этот вечнозеленый кустарник или дерево относится к семейству Миртовых (Myrtaceae), которое состоит всего из двух видов Лума остроконечная (Luma apiculata) и Белый чилийский мирт(Luma chequen).
Лума остроконечная (Мирт лума, Мирт люма, Чилийский мирт)
(лат. Luma apiculata)
Львиный зев (Антирринум)
(лат. Antirrhinum)
А Б В Г Д Ж З И К Л М Н О П Р С Т У Ф Х Ц Ч Ш Э Ю Я
Природные токсины в продуктах питания
Что такое природные токсины?
Природные токсины – это токсичные вещества природного происхождения, вырабатываемые некоторыми видами живых организмов. Эти токсины не опасны для вырабатывающих их организмов, но могут быть токсичны для других, в том числе для человека, в случае их приема с пищей. Эти химические вещества имеют разнообразную структуру и различаются по биологической функции и степени токсичности.
Некоторые токсины вырабатываются растениями и играют роль защитного механизма против хищников, насекомых или микроорганизмов или же образуются в результате поражения растений микроорганизмами, такими как плесневые грибы, вследствие климатического стресса (засуха или чрезвычайно высокая влажность).
Другими источниками природных токсинов являются микроскопические водоросли и планктон, обитающие в океанах и иногда озерах и вырабатывающие химические вещества, токсичные для человека, но не для рыб или моллюсков, питающихся этими организмами. В случае употребления человеком рыбы или моллюсков, содержащих эти токсины, может быстро наступить неблагоприятная реакция.
Ниже приводится описание некоторых природных токсинов, наиболее часто встречающихся в продуктах питания и создающих угрозу для нашего здоровья.
Биотоксины, вырабатываемые водными организмами
Токсины, вырабатываемые морскими и пресноводными водорослями, называются водорослевыми. Эти токсины продуцируются некоторыми видами водорослей в период цветения. Вероятность содержания этих токсинов в моллюсках, таких как мидии, устрицы и гребешки, выше, чем в рыбе. Водорослевые токсины могут вызывать диарею, рвоту, ощущение покалывания в конечностях, паралич и другие эффекты у человека, других млекопитающих и рыб. Они могут накапливаться в организме моллюсков и рыбы или заражать питьевую воду. Они не имеют цвета и запаха и не разрушаются в процессе термической обработки или при замораживании.
Еще одним примером является сигуатера, или отравление в результате употребления в пищу рыбы, зараженной сигуатоксином – веществом, вырабатываемым динофлагеллятами – водными одноклеточными организмами. Сигуатоксин накапливается в организме таких рыб, как барракуда, черный групер, луциан-собака и королевская макрель. Симптомами сигуатеры являются тошнота, рвота и неврологические симптомы, такие как ощущение покалывания в пальцах рук и ног. В настоящее время лечения при отравлении сигуатоксином нет.
Цианогенные гликозиды
Цианогенные гликозиды – это фитотоксины (т.е. токсические соединения, вырабатываемые растениями), встречающиеся в составе по меньшей мере 2000 видов растений, многие из которых употребляются в пищу в некоторых регионах мира. К наиболее массово потребляемым продуктам питания, содержащим цианогенные гликозиды, относятся кассава, сорго, ядра косточковых плодов, корни бамбука и миндаль. Токсический потенциал цианогенного растения зависит, главным образом, от того, насколько высокой будет концентрация цианида в организме человека в результате его употребления в пищу. У человека острая интоксикация цианидами может иметь следующие клинические признаки: учащение дыхания, падение кровяного давления, головокружение, головная боль, боль в животе, рвота, диарея, спутанность сознания, цианоз, сопровождаемый фибриллярными мышечными сокращениями и судорогой, после чего наступает терминальная кома. Смерть в результате отравления цианидами может происходить при достижении ими концентраций, превышающих метаболические способности конкретного организма.
Фуранокумарины
Эти токсины продуцируются разнообразными растениями, такими как пастернак (растение, родственное моркови и петрушке), корнеклубнях сельдерея, цитрусовых (лимон, лайм, грейпфрут, бергамот) и некоторые лекарственные растения. Фуранокумарины – токсины, вырабатываемые растением в ответ на раздражитель, например, физическое повреждение. У чувствительных людей эти токсины могут вызвать нарушения работы желудочно-кишечного тракта. Фуранокумарины обладают фотосенсибилизирующим действием и могут вызывать серьезные раздражения кожи под воздействием ультрафиолета. Чаще всего такие реакции возникают при попадания сока этих растений на кожу, однако описаны случаи аналогичного эффекта в результате употребления в пищу больших количеств овощей, богатых фуранокумаринами.
Лектины
Многие бобы содержат токсины, называемые лектинами. В наибольшей концентрации они присутствуют в фасоли, особенно красной. Всего 4 или 5 сырых бобов могут спровоцировать сильную боль в животе, рвоту и диарею. Лектины разрушаются при замачивании сушеных бобов в течение по меньшей мере 12 часов и их варке на сильном огне в течение не менее 10 минут. Консервированная фасоль уже подвергалась такой обработке и может употребляться в пищу в готовом виде.
Микотоксины
Микотоксины – это токсичные вещества природного происхождения, вырабатываемые некоторыми видами плесневых грибов. Плесневые грибы растут на целом ряде видов продовольственной продукции, таких как злаки, сухофрукты, орехи и специи. Появление плесени может иметь место как до, так и после уборки урожая, на этапе хранения и/или на готовых продуктах питания в условиях благоприятной температуре и высокой влажности.
Большинство микотоксинов отличается химической стабильностью и не разрушается в процессе термической обработки. Присутствующие в продуктах питания микотоксины могут вызывать острую интоксикацию, симптомы которой развиваются вскоре после употребления сильно контаминированных продуктов питания и даже могут привести к летальному исходу. Хроническое потребление микотоксинов с продуктами питания может оказывать долгосрочное негативное воздействие на здоровье, в частности, провоцируя онкологические заболевания и иммунодефицит.
Соланин и чаконин
Все растения семейства пасленовых, к которому относятся томаты, картофель и баклажаны, содержат природные токсины соланин и чаконин (гликоалкалоиды). Как правило, концентрация этих веществ в растениях невысока. Тем не менее, в более высокой концентрации они присутствуют в побегах картофеля и кожуре и зеленоватых частях его клубней, имеющих горький привкус, а также в зеленых томатах. Растения вырабатывают токсин в ответ на внешний раздражитель, такой как механическое повреждение, ультрафиолетовое излучение, колонизация микроорганизмами и нападение со стороны насекомых-вредителей и травоядных животных. Для предупреждения возникновения соланина и чаконина в картофеле важно хранить клубни в темном, прохладном и сухом месте. Также не рекомендуется употреблять в пищу позеленевшие или пускающие ростки части клубней.
Ядовитые грибы
Дикорастущие грибы могут содержать ряд токсинов, например, мусцимол и мускарин, которые могут вызывать рвоту, диарею, спутанность сознания, нарушения зрения, повышенное слюноотделение и галлюцинации. Симптомы начинают проявляться через 6–24 часа после употребления грибов в пищу. Обычно для смертельного отравления характерно позднее развитие тяжелых симптомов, свойственных поражению печени, почек и нервной системы. Чистка и термическая обработка грибов не позволяют ликвидировать содержащиеся в них токсины. Рекомендуется избегать употребления в пищу любых дикорастущих грибов при отсутствии полной уверенности в их безвредности.
Пирролизидиновые алкалоиды
Пирролизидиновые алкалоиды (ПА) – это токсины, которые вырабатывают около 600 растений. В наибольшем количестве их продуцируют растения семейств бурачниковые, астровые и бобовые. Многие из этих растений – сорняки, растущие на сельскохозяйственных угодьях и засоряющие продовольственные культуры. ПА вызывают широкий спектр негативных эффектов. Они могут обладать острой токсичностью. В этой связи главным источником беспокойства является способность некоторых ПА повреждать ДНК клеток, что может провоцировать онкологические заболевания.
ПА не разрушаются в процессе термической обработки. Они обнаруживаются в травяных сборах, меде, ароматических травах и специях и других видах продовольственной продукции, таких как злаки и продукты на их основе. Тем не менее, уровень их потребления людьми считается низким. Ввиду сложности вопроса и большого числа таких соединений общий риск для здоровья в полной мере еще не определен. Комитет Кодекса ФАО/ВОЗ по загрязняющим примесям в продуктах питания ведет разработку рекомендаций по предупреждению попадания содержащих ПА растений в продовольственную цепочку.
Что могу сделать я для снижения риска, связанного с природными токсинами?
Важно помнить, что природные токсины могут присутствовать в целом ряде культур и продуктах питания. В нормальном сбалансированном здоровом рационе концентрация природных токсинов намного ниже порогов острого и хронического токсического действия.
Для снижения риска для здоровья, связанного с присутствием природных токсинов в продуктах питания, рекомендуется:
• не думать, что все «природное» по определению безвредно;
• выбрасывать поврежденные, мятые, изменившие цвет и, в частности, плесневые продукты питания;
• выбрасывать продукты питания, которые на запах или вкус не являются свежими или имеют непривычный вкус;
• употреблять в пищу только те грибы или дикие растения, которые точно не являются ядовитыми.
Деятельность ВОЗ
ВОЗ в сотрудничестве с ФАО отвечает за оценку риска, который представляют природные токсины для человека в результате контаминации продуктов питания, и выработку рекомендаций по обеспечению необходимой защиты.
Оценка риска в связи с присутствием природных токсинов в продуктах питания выполняется Комитетом экспертов ФАО/ВОЗ по пищевым добавкам (JECFA) и используется правительствами стран и Комиссией Кодекс Алиментариус (нормативным межправительственным органом по пищевым стандартам) для определения предельных допустимых значений концентрации различных примесей в продуктах питания или выработки других рекомендаций по управлению рисками в интересах предотвращения или снижения контаминации. Стандарты Кодекса являются международным ориентиром для национальных производителей продовольствия и торговли продовольствием и призваны гарантировать потребителям во всем мире, что приобретаемые ими продукты питания соответствуют установленным стандартам безопасности и качества, где бы они ни были произведены.
JECFA устанавливает предельно допустимые уровни потребления различных природных токсинов.
В состав JECFA или специальных научных экспертных групп ФАО/ВОЗ входят независимые международные эксперты, которые проводят научные обзоры всех опубликованных исследований и других данных по отдельным природным токсинам. По итогам этой работы по оценке риска для здоровья устанавливаются либо предельные допустимые уровни потребления или формулируются другие рекомендации для обозначения степени опасности для здоровья (например, пределы экспозиции). Выдвигаются рекомендации относительно управления рисками и мер по предотвращению и снижению контаминации, а также аналитических методов и мероприятий по мониторингу и контролю.
Во избежание нанесения ущерба здоровью людей содержание природных токсинов в продуктах питания должно быть максимально низким. Природные токсины не только являются источником риска для здоровья человека и животных, но и негативно воздействуют на ситуацию с продовольственной безопасностью и питанием, поскольку ограничивают доступ людей к здоровой пище. ВОЗ настоятельно рекомендует национальным органам власти вести мониторинг содержания наиболее значимых природных токсинов в продовольственной продукции, реализуемой на их рынке, и принимать меры для максимального его сокращения и обеспечивать соблюдение международных рекомендаций по предельно допустимым значениям, условиям хранения и законодательству.
Сравнительный анализ экспрессии генов у чайного растения
(Camellia sinensis (L.) Kuntze) при низкотемпературном стрессе
Vavilovskii Zhurnal Genet Selektsii. 2020 Oct; 24(6): 598–604.
Language: Russian | English
L.S. Samarina
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
A.O. Matskiv
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
N.G. Koninskaya
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
T.A. Simonyan
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
V.I. Malyarovskaya
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
L.S. Malyukova
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
L.S. Samarina,
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
Received 2020 Jan 15; Revised 2020 Jul 6; Accepted 2020 Jul 7.
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License
Abstract
Низкотемпературный стресс – один из главных факторов, ограничивающих распространение
и снижающих урожайность многих субтропических культур, в том числе и чая. Для эффективной селекции
чая на устойчивость к морозу необходимо выявить генетические особенности ответа на холод у устойчивых
генотипов и найти маркеры для определения доноров устойчивости в коллекциях. В настоящей работе про-
веден сравнительный анализ экспрессии 18 генов (ICE1, CBF1, DHN1, DHN2, DHN3, NAC17, NAC26, NAC30, bHLH7,
bHLh53, P5CS, WRKY2, LOX1, LOX6, LOX7, SnRK1.1, SnRK1.2, SnRK1.3), вовлеченных в абиотический стрессовый
ответ у двух контрастных по устойчивости генотипов чая в условиях холода и мороза. Низкотемператур-
ный стресс индуцировали путем помещения растений в холодильные камеры и снижением температуры
до 0…+2 °С на семь дней (холодовой стресс) с последующим снижением температуры до –4…–6 °С на пять
дней (промораживание). Кондуктометрическим методом измеряли электропроводность тканей листа, в ре-
зультате чего были подтверждены различия по признаку устойчивости у двух исследуемых генотипов чая:
холодовое воздействие не приводило к изменению электропроводности тканей листа, но после промора-
живания этот показатель возрастал в большей степени у неустойчивого генотипа. Методом qRT-PCR анализи-
ровали относительный уровень экспрессии генов на фоне референсного гена актина. При индукции стресса
показана повышенная экспрессия всех исследуемых генов. У устойчивого генотипа чая выявлен ряд генов,
более активно экспрессирующихся по сравнению с неустойчивым генотипом: ICE1, CBF1, DHN2, NAC17, NAC26,
bHLh53, WRKY2, P5CS, LOX6, SnRK1.1, SnRK1.3. Эти гены могут быть маркерами устойчивости для поиска доно-
ров в коллекциях геноресурсов. Показано, что у устойчивого генотипа чая экспрессия генов холодового от-
вета начинается уже на стадии акклиматизации. Для дальнейших исследований комплексной устойчивости
растений к низкотемпературному стрессу актуальным является изучение экспрессии этих генов в других
органах чайного растения (побегах, корнях) при разной силе низкотемпературного воздействия.
Keywords: Camellia sinensis, экспрессия генов, морозоустойчивость, транскрипционные факторы, протеинкиназы, липоксигеназы
Abstract
Low-temperature stress is one of the main factors limiting the distribution and reducing the yield of
many subtropical crops, including the tea crop. Efficient breeding to develop frost-tolerant cultivars requires a reliable
set of genetic markers for identifying resistance donors, and that is why it is necessary to reveal the specific
genetic response in frost-tolerant genotypes in comparison with frost- susceptible ones. In this work, we performed
a comparative analysis of the expression of 18 tea genes (ICE1, CBF1, DHN1, DHN2, DHN3, NAC17, NAC26, NAC30,
bHLH7, bHLh53, P5CS, WRKY2, LOX1, LOX6, LOX7, SnRK1.1, SnRK1.2, SnRK1.3) under cold and frost conditions in two
tea genotypes, tolerant and susceptible. Low-temperature stress was induced by placing the potted plants in cold
chambers and lowering the temperature to 0…+2 °С for 7 days (cold stress), followed by a decrease in temperature
to –4…–6 °С for 5 days (frost stress). Relative electrical conductivity of leaf was measured in response to the stress
treatments, and a significant difference in the frost tolerance of the two tea genotypes was confirmed. Cold exposure
did not lead to a change in the electrical conductivity of leaf tissue. On the other hand, frost treatment resulted
in increased REC in both genotypes and to a greater extent in the susceptible genotype. Increased expression of all
the genes was shown during cold and frost. The genes that were strongly expressed in the tolerant tea genotype
were revealed: ICE1, CBF1, DHN2, NAC17, NAC26, bHLh53, WRKY2, P5CS, LOX6, SnRK1.1, SnRK1.3. These genes can be
proposed as markers for the selection of frost-tolerance donors in tea germplasm collections. Additionally, it was shown that the tolerant genotype is characterized by an earlier response to stress at the stage of cold acclimation.
The study of the expression of the identified genes in different organs of tea plants and in different exposures to
low temperature is relevant for further investigations.
Keywords: Camellia sinensis, gene expression, frost tolerance, transcription factors, protein kinases, lipoxygenases
Введение
Низкотемпературный стресс, мороз (< 0 °С) и холод
(0…+10 °С), ограничивает ареал распространения многих
теплолюбивых культур, в том числе и чая. Перестройка
метаболизма в ответ на этот абиотический стресс,
включающая накопление антиоксидантов и осмолитов
для повышения устойчивости, происходит путем запуска
сложных сигнальных путей (Dubouzet et al., 2003).
Регуляция этих путей осуществляется основными регуляторными
генами: COR (cold-responsive). К ним относят
гены-регуляторы холодового ответа ICE (inducer of CBF
expression), CBF (C-repeat-binding factor) и их мишени:
KIN (cold-induced), LTI (low temperature induced) и RD
(responsive to dehydration) (Morsy et al., 2005). Продукты
этих генов классифицируют на две группы: первая
включает гены метаболизма семейств белков, LEA (late
embryogenesis abundant proteins), HSP (heat shock proteins),
антифриз-белков, белков метаболизма липидов (LOX ),
дегидринов (DHN) и осморегуляторов – сахаров, свободных
стеролов, раффинозы, глюкозидов, аминокислот;
вторая – транскрипционные факторы, регулирующие
передачу сигналов и экспрессию генов ответа на холод
(Megha et al., 2018).
Различные по устойчивости к этому фактору культуры
характеризуются разнообразными механизмами устойчивости,
а у древесных культур, таких как чай (Camellia
sinensis (L.) Kuntze), ответ на стресс более сложный и
комплексный (Hao et al., 2018). Для чайного растения,
основная зона произрастания которого – тропические и
субтропические регионы, актуальным является создание
морозоустойчивых сортов, позволяющих значительно расширить
его ареал и увеличить площади возделывания. Северо-
Западный Кавказ – один из самых северных регионов
промышленного выращивания чая в мире. Доместикация
чайного растения в этом регионе длилась около 150 лет, в
течение которых плантации распространились из района
Озургетти в Грузии (41°55′27″ N, 41°59′24″ E) на север до
Майкопа (44°36′40″ N, 40°06′40″ E). Поэтому коллекции
гермоплазмы чая на Кавказе могут быть источником генотипов
с повышенной морозоустойчивостью.
Ранее было показано, что у чайного растения гены
CsICE1 и CsCBF1 – главные COR-гены ответа и адаптации
к низкотемпературному стрессу (Wang et al., 2012;
Yuan et al., 2013). Были сообщения также, что экспрессия
COR-генов регулируется как CBF-опосредованным
АБК-независимым путем, так и bZIP-опосредованным
AБК-зависимым путем (Ban et al., 2017). Множество
транскрипционных факторов (DHN, WRKY, HD-Zip, NAC,
bHLH и др.) и генов синтеза метаболитов запускаются в
ответ на холод (Yue et al., 2015; Wang et al., 2016a, b; Chen et al., 2018; Cui et al., 2018; Shen et al., 2018; Zhu et al.,
2018). Об этих и других генах нами был сделан детальный
обзор последних публикаций (Самарина и др., 2019). Цель
настоящей работы – провести сравнительный анализ экспрессии
генов, вовлеченных в абиотический стрессовый
ответ у чая, в условиях холода и мороза у кавказских
генотипов, произрастающих в одном из самых северных
регионов промышленного выращивания чая в мире.
Материалы и методы
Растительный материал и условия эксперимента.
Объектом
исследования были трехлетние вегетативно
размноженные горшечные растения чая двух контрастных
по устойчивости генотипов (коллекции чая Федерального
исследовательского центра «Субтропический научный
центр Российской академии наук» (ФИЦ СНЦ РАН)):
устойчивой к морозу формы А-2016, произрастающей в
полевой коллекции Майкопского филиала ФИЦ СНЦ РАН
и неустойчивого к морозу сорта Колхида полевой коллекции
ФИЦ СНЦ РАН (Сочи) (Туов, Рындин, 2011; Гвасалия,
2015). Горшечные растения (рис. 1) в количестве 10 шт.
каждого генотипа выращивали в объеме 2 л бурой кислой
лесной почвы (pHН2О = 5.0). До индукции низкотемпературного
воздействия растения в течение месяца находились
в лабораторных условиях при температуре 20 ± 2 °С
с оптимальным режимом полива и освещением лампами
дневного света, фотопериодом 16/8 с интенсивностью
освещения 3000 лк. После этого у них брали листья для
анализа (контрольная группа). Затем эти растения помещали
в холодовые камеры. Индукцию стресса проводили
воздействием температурой до 0…+2 °С в течение семи
дней (холодовой стресс) с последующим снижением температуры
до –4…–6 °C на пять дней (промораживание),
световой режим сохраняли прежним.
Для лабораторных анализов на всех этапах исследования
(контроль, холод, промораживание) использовали
третий (для выделения РНК) и четвертый (для физиологических
анализов) листья сверху. Для физиологических
анализов и выделения РНК каждая из трех повторностей
представляла собой смешанную пробу из листьев от трех
растений.
Фенотипирование устойчивости к холоду. Кондуктометрическим
методом определяли относительную электропроводность
тканей (%), стабильность клеточных мембран
и повреждение тканей листа (%) – с помощью портативного
кондуктометра ST300C (Ohaus). Навеску 200 мг
свежего листа погружали в 150 мл деионизированной
воды, определяли электропроводность сразу после погружения
(L0), затем через 2 ч (L1), далее кипятили на
водяной бане 60 мин при 100 °C и определяли электропроводность после остывания раствора (L2). Относительную
электропроводность рассчитывали по формуле:
REC (%) = L0/L1 × 100.
Стабильность клеточных мембран (CMI, %) вычисляли
по формуле:
CMI = (1 – (L1/L2)) / (1 – (C1/C2)) × 100,
где C1 и C2 – средняя электропроводность контроля до
и после кипячения соответственно (Bajji et al., 2002).
Степень повреждения тканей оценивали как 100 – CMI.
Статистическую обработку полученных данных выполняли
методом однофакторного дисперсионного анализа.
Анализ экспрессии генов. Выделение РНК из свежих
листьев проводили с использованием наборов реагентов
Лира (http://biolabmix.ru/). Качество РНК оценивали методом
электрофореза в агарозном геле, ее концентрацию
определяли на приборе BioDrop μLite (Serva). Разведенную
РНК обрабатывали ДНКазой и подтверждали отсутствие
примесей геномной ДНК методом qRT-PCR. Обратную
транскрипцию осуществляли набором реагентов
M-MuLV-RH (http://biolabmix.ru/). Количественный анализ
экспрессии генов методом ПЦР в реальном времени делали
на приборе LightCycler96 (Roche). Смесь ПЦР готовили
на основе наборов реагентов БиоМастер HS-qPCR SYBR
Blue(2×) (http://biolabmix.ru/). Объем смеси – 12.5 мкл, в
нее входили по 0.5 мкл каждого праймера (из раствора
10 ммоль) (см. таблицу), 6.25 мкл буфера, 1 мкл кДНК
(500 нг/мкл) и вода. Использовали стандартные условия
для ПЦР с двухшаговой амплификацией (35 циклов),
температурой отжига праймеров 60 °C. В качестве референсного
гена был Actin, анализ экспрессии выполняли в
трех биологических повторностях, данные обрабатывали
с помощью программного обеспечения LightCycler96.
Относительный уровень экспрессии гена рассчитывали
по алгоритму:
2–ΔΔCq,
где ΔΔCq = (Cqgene of interest – Cq internal control)treatment –
– (Cq gene of interest – Cq internal control)control
Genes and primers included in the study
Результаты
Исследования показали, что холодовое воздействие
(0…+2 °C) не приводило к существенным изменениям
показателей электропроводности тканей листа. При промораживании
(–4…–6 °C) значительно возрастал относительный
уровень электропроводности, а стабильность
клеточных мембран снижалась, что свидетельствует о
повышении выхода электролитов из тканей. При этом
растения более устойчивого генотипа в меньшей степени
повреждались
Relative electrical conductivity (REC), cell membranes integrity, tissue damage rate of tea leaves during cold (0…+2 °C)
and frost (–4…–6 °C) treatment: S, susceptible genotype; R, resistant genotype.
Относительный уровень экспрессии всех генов, включенных
в эксперимент, повышался при индукции низкотемпературного
стресса (рис. 3). При сравнении ответа холод/мороз достоверные различия наблюдались по экспрессии
генов ICE1, WRKY2, DHN, NAC, bHLH7, LOX1,
LOX6, P5CS. По другим генам различия в ответе холод/
мороз несущественны.
Relative expression level (REL) of cold stress genes in tea leaves (S, susceptible genotype; R, resistant genotype) exposed
to cold (0…+2 °C) and frost (–4…–6 °C).
Letters above bars indicate significance of differences at p < 0.05.
При сравнении ответа устойчивый/неустойчивый генотип
по большинству генов выявлены значимые различия.
Из 18 генов 11 проявили более высокий уровень экспрессии
у устойчивого генотипа.
Экспрессия гена-регулятора холодового ответа ICE1 у
устойчивого генотипа достоверно повышалась в 1.5–1.8
раза при индукции стресса. У неустойчивого генотипа
она оставалась на уровне контроля. Транскрипты CBF1
накапливались у устойчивого генотипа в 3 раза сильнее,
чем у неустойчивого, и составили 120 и 45 единиц соответственно.
Апрегуляция гена WRKY2 усиливалась при
холоде и промораживании в большей степени у устойчивого
генотипа – в 200 раз. Транскрипты генов дегидринов
DHN усиленно накапливались у обоих генотипов
при низкотемпературном стрессе. Достоверные различия
между
генотипами отмечены только по экспрессии DHN2.
Оверэкспрессия трех генов семейства NAC наблюдалась
при низкотемпературном стрессе у чая, которая в среднем
составила 2–9 единиц. При этом устойчивый генотип отличался
более высокой экспрессией генов NAC26 и NAC17
в сравнении с неустойчивым. Гены HLH7 и HLh53 также
усиленно экпрессировались при холоде и промораживании
в 3–4 раза, при этом HLh53 активнее проявился у
устойчивого генотипа. По гену HLH7 различий между
двумя генотипами не отмечено.
Экспрессия генов семейства LOX также повышалась
в 5–26 раз при индукции холода и мороза. У устойчивого
генотипа более активно проявился ген LOX6 – в 3 и
7 раз – при холоде и морозе соответственно. Ген LOX7
в большей степени активен при холоде у неустойчивого
генотипа, а ген LOX1 экспрессировался одинаково у двух
генотипов. Три гена семейства SnRK апрегулировались
у обоих сортов, ~ 2–4 раз при холоде и морозе, при этом
у устойчивого генотипа отмечен более высокий уровень
экспрессии SnRK1.1 и SnRK1.3, по сравнению с неустойчивым
сортом.
В целом сравнительный анализ экспрессии генов у двух
генотипов показал, что устойчивый генотип раньше реагирует
на стресс, транскрипты ряда генов у него сильнее
накапливаются уже на этапе холодовой акклиматизации.
Гены ICE1, CBF1, WRKY2, DHN2, NAC17, NAC26,
SnRK1.1, SnRK1.3, bHLh53, P5CS, LOX6, проявились в
большей степени у устойчивого генотипа чая при низкотемпературном
воздействии и могут быть маркерами для
отбора доноров устойчивости к холоду
Обсуждение
Проведен сравнительный анализ экспрессии генов у двух
контрастных по устойчивости генотипов чая в условиях
индукции холода и промораживания для выявления различий
в их ответных реакциях.
В анализ был включен ряд генов, которые, как ранее сообщалось,
играют или могут играть важную роль в ответе
на холодовой стресс. В опубликованных транскриптомных
исследованиях показано, что ответ на холод и мороз у
чайного растения различается (Li et al., 2019), поэтому мы сравнивали относительный уровень экспрессии генов
в условиях этих двух стрессовых воздействий. В результате
обнаружен ряд генов, которые экспрессируются по-
разному в условиях холода и мороза; установлены гены,
различающиеся по уровню экспрессии у устойчивого и
восприимчивого к морозу генотипов. Сравнение уровня
экспрессии у двух различных по устойчивости генотипов
может помочь предположить, какие из этих генов могут
быть маркерами для поиска доноров устойчивости в селекции
чая.
Низкотемпературный стресс приводит к нарушению
стабильности клеточных мембран, изменению липидного,
белкового и ферментного баланса клетки, вызванному
окислительными процессами (Somerville, 1995; Thomashow
et al., 1999). Наши результаты подтвердили, что
А-2016 более морозоустойчив, чем сорт Колхида, так как
у него в большей степени сохранялась целостность клеточных
мембран при индукции заморозков.
Обнаружено, что у устойчивого генотипа более активно
экспрессировались гены ICE1, CBF1, DHN2, NAC17,
NAC26, bHLh53, WRKY2, P5CS, LOX6, SnRK1.1, SnRK1.3
и их экспрессия была существенно выше уже на стадии
холодовой акклиматизации, т. е. на первом этапе индукции
стресса. Эти результаты согласуются с данными
опубликованных исследований, в которых повышенная
устойчивость растений чая обусловлена более скорым
ответом на холодовой стресс (Ban et al., 2017; Li et al.,
2019).
Известно, что DHNs – группа генов, кодирующих белки-
дегидрины, которые действуют как криопротекторы,
молекулярные шапероны, а также антиоксиданты, играя
базовую роль в ответе растений на абиотические стрессы,
входят в семейство транскрипционных факторов LEA II
(Late Embryogenesis Abundant) (Hanin et al., 2011). Из
трех генов DHN, ген DHN2 может служить маркером
холодоустойчивых сортов чая, что согласуется с ранее
опубликованными данными по китайским генотипам чая
(Ban et al., 2017).
Семейство транскрипционных факторов NAC кодирует
белки, играющие важную роль в передаче ауксинового
сигнала и развитии меристем, латеральных корней,
клеточной
стенки, биосинтезе флавоноидов и др. По данным
других исследователей, экспрессия этих генов индуцируется
засухой, засолением, холодом и повышением содержания
абсцизовой кислоты (АБК) (Wang et al., 2016a).
Наши результаты также подтверждают повышение уровня
экспрессии этих генов у обоих генотипов как при холоде,
так и при промораживании.
Гены семейства WRKY участвуют в АБК-зависимом
пути ответа на абиотический стресс, а также в регуляции
роста и развития растений. У чайного растения был выделен
новый ген этого семейства, CsWRKY2, экспрессия
которого повышалась при холодовом стрессе (Wang et al.,
2016b). Полученные нами результаты согласуются с этими
данными, к тому же у устойчивого генотипа CsWRKY2
проявился более активно и при холоде, и при морозе, поэтому
мы предполагаем, что он также может быть одним
из маркеров устойчивости.
Гены SnRK1.1, SnRK1.2, SnRK1.3 кодируют ферменты
протеинкиназы, регулирующие катаболизм углеводов, экспрессию генов метаболизма сахарозы, в частности
генов
SUS. В ответ на холод у чайного растения экспрессия
этих генов существенно возрастала, что отмечено и
у китайских сортов чая (Yue et al., 2015). Кроме того, по
нашим данным, устойчивый генотип характеризовался
более активной экспрессией SnRK1.1 и SnRK1.3, следовательно,
углеводный метаболизм у него протекал более
активно.
К семейству транскрипционных факторов bHLH, участвующих
в широком спектре биологических процессов,
относятся: вторичный метаболизм брассиностероидов,
жасмоновой кислоты, синтез антоцианов, модуляция
роста
и развития растений, контроль ветвления побегов
и др. Кроме того, bHLH играют важную роль в передаче
сигнала АБК и ответе растений на абиотические стрессы.
У чайного растения обнаружено 39 генов CsbHLH,
экспрессия которых повышалась в условиях засухи (Cui
et al., 2018). Мы анализировали экспрессию двух генов
из этого семейства, и оба из них апрегулировались при
низкотемпературном стрессе, а ген bHLh53 активнее экспрессировался
у устойчивого генотипа.
Гены семейства липоксигеназ LOX вовлечены в катаболизм
липидов, синтез оксилипина, жасмоновой кислоты
и C6-альдегидов (Li et al., 2017). У чайного растения
обнаружено, что гены CsLOX1, CsLOX6 и CsLOX7 могут
играть важную роль в ответе на стрессы (холод, засуху,
биотический стресс) в АБК-независимом пути ответа (Zhu
et al., 2018), поэтому мы включили эти гены в эксперимент.
В наших результатах показано, что эти три гена экспрессировались
сильнее при холоде и промораживании,
в сравнении с контролем, однако у устойчивого генотипа
только ген LOX6 более активно экспрессировался при
стрессе, в сравнении с неустойчивым.
Ген P5CS – один из генов, вовлеченных в синтез пролина
(Szekely et al., 2008). Более высокий уровень его
экспрессии наблюдался при холоде у устойчивого генотипа
чая. Достоверных различий экспрессии этого гена
между устойчивыми и неустойчивыми сортами чая не
отмечено (Ban et al., 2017). Проведение дополнительных
исследований с разными сортами поможет верифицировать
полученные данные.
Заключение
Таким образом, показана повышенная экспрессия всех
изучаемых генов: DHN1, DHN2, DHN3, NAC17, NAC26,
NAC30, bHLH7, bHLh53, WRKY2, LOX1, LOX6, LOX7,
SnRK1.1, SnRK1.2, SnRK1.3. Выявлен ряд генов, более
активно экспрессирующихся у устойчивого генотипа чая:
ICE1, CBF1, DHN2, NAC17, NAC26, bHLh53, WRKY2,
P5CS, LOX6, SnRK1.1, SnRK1.3. Обнаружены гены, различающиеся
по экспрессии в холоде и в морозе: ICE1,
WRKY2, DHN, NAC, bHLH7, LOX1, LOX6, P5CS. В целом
устойчивый генотип характеризуется более ранним ответом
на стресс. Однако в нашей работе проанализировано
только два генотипа чая, поэтому для дальнейшей верификации
маркеров устойчивости к холоду необходимо
привлечение большего количества генотипов. Для дальнейших
исследований актуально изучение экспрессии
этих генов в других органах растений чая при разной силе
низкотемпературного воздействия.
Conflict of interest
The authors declare no conflict of interest.
References
Гвасалия М.В. Спонтанные и индуцированные сорта и формы чая
(Camellia sinensis (L.) Kuntze) во влажных субтропиках России
и Абхазии, перспективы их размножения и сохранения в культуре
in vitro. Краснодар, 2015.
[Gvasaliya M.V. Spontaneous and Induced Cultivars and Forms of
Tea (Camellia sinensis (L.) Kuntze) in Humid Subtropics of Russia
and Georgia: Prospects for their Cultivation and in vitro Conservation.
Krasnodar, 2015. (in Russian)]
Самарина Л.С., Малюкова Л.С., Гвасалия М.В., Ефремов А.М., Маляровская
В.И., Лошкарёва С.В., Туов М.Т. Генетические механизмы
акклиматизации чайного растения (Camellia sinensis (L.)
Kuntze) к холодовому стрессу. Вавиловский журнал генетики и
селекции. 2019;23(8):958-963. DOI 10.18699/VJ19.572.
[Samarina L.S., Malyukova L.S., Gvasaliya M.V., Efremov A.M.,
Malyarovskaya V.I., Loshkareva S.V., Tuov M.T. Genes underlying
cold acclimation in the tea plant (Camellia sinensis (L.) Kuntze).
Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics
and Breeding. 2019;23(8):958-963. DOI 10.18699/VJ19.572.
(in Russian)]
Туов М.Т., Рындин А.В. Итоги изучения перспективных гибридов
чая в субтропиках Российской Федерации. Субтропическое и
декоративное садоводство. 2011;44:101-109.
[Tuov M.T., Ryndin A.V. The results of studying prospective hybrids
of tea plant in subtropics of the Russian Federation. Subtropicheskoye
i Dekorativnoye Sadovodstvo = Subtropical and Ornamental
Horticulture. 2011;44:101-109. (in Russian)]
Bajji M., Kinet J.-M., Lutts S. The use of the electrolyte leakage method
for assessing cell membrane stability as a water stress tolerance
test in durum wheat. Plant Growth Regul. 2002;36:61-70. https://
doi.org/10.1023/A:1014732714549.
Ban Q., Wang X., Pan C., Wang Y., Kong L., Jiang H., Xu Y., Wang W.,
Pan Y., Li Y., Jiang Ch. Comparative analysis of the response and
gene regulation in cold resistant and susceptible tea plants. PLoS
One. 2017;12(12):e0188514. DOI 10.1371/journal.pone.0188514.
Chen J., Gao T., Wan S., Zhang Y., Yang J., Yu Y., Wang W. Genomewide
identification, classification and expression analysis of the HSP
gene superfamily in tea plant (Camellia sinensis). Int. J. Mol. Sci.
2018;19:2633. DOI 10.3390/ijms19092633.
Cui X., Wang Y.-X., Liu Z.-W., Wang W.-L., Li H., Zhuang J. Transcriptome-
wide identification and expression profile analysis of the
bHLH family genes in Camellia sinensis. Funct. Integr. Genomics.
2018;18:489-503. https://doi.org/10.1007/s10142-018-0608-x.
Dubouzet J.G., Sakuma Y., Ito Y., Kasuga M., Dubouzet E.G., Miura S.,
Seki M., Shinozaki K., Yamaguchi-Shinozaki K. OsDREB genes in
rice, Oryza sativa L., encode transcription activators that function
in drought-, high-salt- and coldresponsive gene expression. Plant J.
2003;33:751e763.
Hanin M., Brini F., Ebel Ch., Toda Y., Takeda Sh., Masmoudi K. Plant
dehydrins and stress tolerance. Plant Signal. Behav. 2011;6(10):
1503-1509. DOI 10.4161/psb.6.10.17088.
Hao X., Horvath D.P., Chao W.S., Yang Y., Wang X., Xiao B. Identification
and evaluation of reliable reference genes for quantitative
real-time PCR analysis in tea plant (Camellia sinensis (L.) O. Kuntze).
Int. J. Mol. Sci. 2014;15:22155-22172. DOI 10.3390/ijms151
222155.
Hao X., Wang L., Zeng J., Yang Y., Wang X. Response and adaptation
mechanisms of tea plant to low-temperature stress. In: Han W.Y.,
Li X., Ahammed G. (Eds.) Stress Physiology of Tea in the Face
of Climate Change. Singapore: Springer, 2018:39-61. https://doi.
org/10.1007/978-981-13-2140-5_3.
Li L., Lu X., Ma H., Lyu D. Jasmonic acid regulates the ascorbateglutathione
cycle in Malus baccata Borkh. roots under low rootzone
temperature. Acta Physiol. Plant. 2017;39:174.
Li Y., Wang X., Ban Q., Zhu X., Jiang Ch., Wei Ch., Bennetzen J.L.
Comparative transcriptomic analysis reveals gene expression associated with cold adaptation in the tea plant Camellia sinensis. BMC
Genomics. 2019;20(1):624. DOI 10.1186/s12864-019-5988-3.
Megha S., Basu U., Kav N.N.V. Regulation of low temperature stress in
plants by microRNAs. Plant Cell Environ. 2018;41:1-15.
Morsy M.R., Almutairi A.M., Gibbons J., Yun S.J., de Los Reyes B.G.
The OsLti6 genes encoding low-molecular-weight membrane proteins
are differentially expressed in rice cultivars with contrasting
sensitivity to low temperature. Gene. 2005;344:171e180.
Shen W., Li H., Teng R., Wang Y., Wang W., Zhuang J. Genomic and
transcriptomic analyses of HD-Zip family transcription factors and
their responses to abiotic stress in tea plant (Camellia sinensis). Genomics.
2018. DOI 10.1016/j.ygeno.2018.07.009.
Somerville C. Direct tests of the role of membrane lipid composition
in low temperature-induced photoinhibition and chilling sensitivity
in plants and cyanobacteria. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995;
92:6215e6218.
Szekely G., Abraham E., Cseplo A., Rigó G., Zsigmond L., Csiszár J.,
Ayaydin F., Strizhov N., Jásik J., Schmelzer E., Koncz C., Szabados
L. Duplicated P5CS genes of Arabidopsis play distinct roles in
stress regulation and developmental control of proline biosynthesis.
Plant J. 2008;53(1):11-28. https://doi.org/10.1111/j.1365-313X.
2007.03318.x.
Thomashow M.F. Plant cold acclimation: freezing tolerance genes and
regulatory mechanisms. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.
1999;50:571-599.
Wang Y., Jiang C.J., Li Y.Y., Wei C.L., Deng W.W. CsICE1 and
CsCBF1: two transcription factors involved in cold responses in
Camellia sinensis. Plant Cell Rep. 2012;31:27-34. DOI 10.1007/
s00299-011-1136-5.
Wang Y.-X., Liu Z.-W., Wu Z.-J., Li H., Zhuang J. Transcriptomewide
identification and expression analysis of the NAC gene family
in tea plant [Camellia sinensis (L.) O. Kuntze]. PLoS One. 2016a;
11(11):e0166727. DOI 10.1371/journal.pone.0166727.
Wang Y., Shu Z., Wang W., Jiang X., Li D., Pan J., Li X. CsWRKY2,
a novel WRKY gene from Camellia sinensis, is involved in cold
and drought stress responses. Biol. Plant. 2016b;60:443-451. DOI
10.1007/s10535-016-0618-2.
Yuan H.Y., Zhu X.P., Zeng W., Yang H.M., Sun N., Xie S.X., Cheng L.
Isolation and transcription activation analysis of the CsCBF1 gene
from Camellia sinensis. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica.
2013;110:147-151.
Yue C., Cao H.L., Wang L., Zhou Y.H., Huang Y.T., Hao X.Y.,
Wang Y.C., Wang B., Yang Y.J., Wang X.C. Effects of CA on sugar
metabolism and sugar-related gene expression in tea plant during
the winter season. Plant Mol. Biol. 2015;88:591-608. DOI 10.1007/
s11103-015-0345-7.
Zhu J., Wang X., Guo L., Xu Q., Zhao S., Li F., Yan X., Liu Sh., Wei Ch.
Characterization and alternative splicing profiles of the lipoxygenase
gene family in tea plant (Camellia sinensis). Plant Cell Physiol.
2018;59(9):1765-1781. DOI 10.1093/pcp/pcy091
Acknowledgments
This work was supported by the Russian Foundation for Basic Research and Krasnodar Kray Ministry of Education, Science, and
Youth, project r_mol_a 19-416-233033. Plant material was provided under project 0683-2019-0002 for gene pool preservation, Ministry of Science and
Higher Education of the Russian Federation.
Contributor Information
L.S. Samarina,
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
A.O. Matskiv,
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
N.G. Koninskaya,
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
T.A. Simonyan,
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
V.I. Malyarovskaya,
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
L.S. Malyukova,
Federal Research Centre the Subtropical Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Sochi, Russia,
РАСТЕНИЯ РОДА ДРОК ( GENISTA L.) — ПЕРСПЕКТИВНЫЕ ИСТОЧНИКИ ЛЕКАРСТВЕННОГО РАСТИТЕЛЬНОГО СЫРЬЯ ДЛЯ СОЗДАНИЯ НОВЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ | Жохова
1. Алиева С. А. Флавоноиды Genista transcaucasica // Химия природных соединений. 1974. № 1. С. 113-114.
2. Гончаров М. Ю., Повыдыш М. Н., Яковлев Г. П. Систематика цветковых растений / Под. ред. д. б. н. Д. Д. Соколова. Санкт-Петербург, Изд.: СПХФА, 2015. С. 189.
3. Ковалев Н. В., Комаров В. Л., Костина К. Ф. и др. Флора СССР. Том 11. Бобовые (первая часть) / гл. ред. акад. В. Л. Комаров. СПб.-М., Изд.: АН СССР. 1941. С. 675.
4. Кравченко В. Н., Георгиянц В. А., Владимирова И. Н. Изучение влияния лекарственных растений на функцию щитовидной железы // Вестник Витебского государственного медицинского университета. 2014. № 4. С. 149-154.
5. Озимина И. И., Фролова О. О. К вопросам хемотаксономии семейства Бобовых // Фундаментальные исследования. 2013. № 4. С. 873-882.
6. Паламарчук А. С., Бондаренко В. Е. Антимикробная активность и химический состав Дрока красильного // Раст. ресурсы. 1976. № 12. С. 229-232.
7. Растительные ресурсы России. Дикорастущие цветковые растения, их компонентный состав и биологическая активность. Т. 3. Семейства Fabaceae-Apiaceae / Отв. ред. А. Л. Буданцев. СПб.-М., Товарищество научных изданий КМК, 2011. C. 608.
8. Черепанов С. К. Сосудистые растения России и сопредельных государств (в пределах бывшего СССР). СПб., Мир и семья, 1995. 992 с.
9. Baali N., Belloum Z., Baali S. et al. Protective Activity of Total Polyphenols from Genista quadriflora Munby and Teucrium polium geyrii Maire in Acetaminophen-Induced Hepatotoxicity in Rats // Nutrients. 2016. V. 8(4). P. 193-200.
10. Batista D., Fale P. L., Serralheiro M. L et al. New In Vitro Studies on the Bioprofile of Genista tenera Antihyperglycemic Extract // Nat. Prod. Bioprospect. 2015. V. 7(6). P. 155-158.
11. Bertoli A., Loi M. C., Pistelli L.et al. Volatile constituents as complementary tools to characterize seven Sardinian Genista species // Biochemical Systematics and Ecology. 2015. V. 62. P. 82-90.
12. Bisby F. A., Buckingham J., Harborne J. B. et al. Phytochemical dictionary of the Leguminosae. Chemical constituents. London. Chapman and Hall. 1994. V. 2. P. 573.
13. Chopin J., Bouillant M. L., Harborn J. B. et al. C-glycosylflavonoids. London, Chapman and Hall. 1975. 816 p.
14. Cubas P., Pardo C., Tahiri H. Molecular approach to the phylogeny and systematics of Cytisus (Leguminosae) and related genera based on nucleotide sequences of nrDNA (ITS region) and cpDNA (trnL-trnF intergenic spacer) // Plant Syst. Evol. 2002. V. 233. P. 223-242.
15. Faugeras G., Paris M. Sur les alcaloїdes des fruits du Genista pilosa L.: caractérisation par chromatografie en phase gazeuse isolement de la cytosine // Compt. Rend. Des séances Acad. Sci. Paris. 1964. V. 258(13). P. 3113-3116.
16. Gill S. Chromatografia cienkowarstwowa I bibuŁowa alkaloidơw chinolisydynowych w kilkugatuhkach z rodzaju Cytisus L. I Genista L. // Acta Poloniae Pharmaceutica. 1964.V. 4. P. 379-386.
17. Guettaf S., Abidli N., Kariche S. et al. Phytochemical screening and antioxidant activity of aqueous extract of Genista Saharae (Coss.&Dur.) // Der Pharmacia Lettre. 2016. V. 8(1). P. 50-60.
18. Hanganu D., Olah N. K., Benedec D. et al. Comparative polyphenolic content and antioxidant activities of Genista tinctoria L. and Genistella sagittalis (L.) Gams (Fabaceae) // Pakistan journal of pharmaceutical sciences. 2016. V. 29(1). P. 301-307.
19. Harborne J. B. Chemosystematics of the Leguminosae. Flavonoid and isoflavonoid patterns in the tribe Genistaea // Phytochemistry. 1969. V. 8. P. 1449-1456.
20. Ingham J. L., Lewis S. C., Bell T. D. et al. Naturally occurring isoflavonoids (18551981) // Fortschr. Chem. Org. Naturst. 1983. V. 23. P. 95-108.
21. Jagadeb M., Badirenath Konkimalla V., Rath S. N. et al. Elucidation of the Inhibitory Effect of Phytochemicals with Kir 6.2 Wild-Type and Mutant Models Associated in Type-1 Diabetes through Molecular Docking Approach // Genomics inform. 2014. V. 12(4). P. 283-288.
22. Lograda T., Chaker A. N., Chalchat J. C. et al. Chemical composition and antimicrobial activity of essential oil of Genista ulicina Spach. and G. vepres Pomel.// Nat. Prod. Commun. 2010. V. 5(5). P. 835-838.
23. Mabberley D. J. The plant book. A portable dictionary of the higher plants. New York, New Rochelle, Mellbourne, Sydney. 1987. 706 p.
24. Pardo C., Cubas P., Tahiri H. Molecular phylogeny and systematic of Genista (Leguminosae) and related genera based on nucleotide sequences of nrDNA (ITS region) and cpDNA (trnL-trnF intergenic spacer) // Plant Syst. Evol. 2004. № 244. Р. 93-119.
25. Popa D. S., Bolfa P., Kiss B. et al. Influence of Genista tinctoria L. or methylparaben on subchronic toxicity of bisphenol A in rats // Biomedical and environmental sciences. 2014. V. 27(2). P. 85-96.
26. Rauter A. P., Martins A., Lopes R. et al. Bioactivity studies and chemical profile of the antidiabetic plant Genista tenera // Journal of Ethnopharmacology. 2009. V. 122. P. 384-393.
27. Rigano D., Russo A., Formisano C. et al. Antiproliferative and cytotoxic effects on malignant melanoma cells of essential oils from the aerial parts of Genista sessilifolia and G. tinctoria // Nat. Prod. Commun. 2010. V. 5(7). P. 1127-1132.
28. Rizzi Longo L., Feoli Chiapella L., Cusma Velari T.et al. Pollen cards of some eastern taxa of Genista L. sect. Spartocarpus Spach. (Cytiseae, Fabaceae) // Atti Soc. tosc. Sci. nat. 2010. V. 117(5). P. 33-44.
29. Swain T. Flavonoids as chemotaxonomic markers in plants // Pigm. Plants. 1981. V. 7. P. 224-236.
30. Taberlet P., Gielly L., Patou G. et al. Universal primers for amplification of three non-coding regions of chloroplast DNA // Plant. Mol. Biol. 1991. № 17. Р. 1105-1109.
31. Tsypysheva. I. P., Petrova P. R., Baykova I. P. et al. Sesonal dynamics of alkaloids of Genista tinctoria L. growing at the Southern Ural Region // Natural Products. 2014. V. 10(7). P. 215-218.
32. Tůmová L., Tůma J. Dyer’s Greenweed (Genista tinctoria L.): constituents and biological activity // Ceska a Slovensca farmacie. 2011. V. 60(2). P. 61-64.
33. White T. J., Bruns T., Lee S. et al. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. USA, Academic Press. 1990. P. 586.
34. Yildimir A. B., Karakas F. P., Turker A. U. In vitro antibacterial and antitumor activities of some medicinal plant extracts, growing in Turkey // Asian Pacific journal of tropical medicine. 2013. V. 6(8). P. 616-624.
растение-терминатор или культура будущего – Наука – Коммерсантъ
Страшный сорняк, захвативший огромные угодья, появился как надежда советского сельского хозяйства. Справиться с ним обычными способами не удается — поэтому, вероятно, стоит начать его хозяйственное использование.
На пленуме ЦК КПСС в 1946 году было принято решение поднимать кормовую базу для сельскохозяйственных животных в стране, и выбор ученых пал на борщевик Сосновского. Первые испытания по введению в культуру борщевика Сосновского состоялись в 1947 году в Полярно-Альпийском ботаническом саду, где он был введен в первичную культуру, изучен и рекомендован для выращивания как кормовое растение. Виды рода борщевик (Heracleum; семейство сельдерейные, или зонтичные) как кормовые растения в СССР стали активно изучать после 1947 года, особенно интенсивно — в 1960–1980 годах, они входили в государственные программы по новым и нетрадиционным кормовым культурам, активно поддержанные КПСС и правительством СССР.
Был впервые описан в Грузии (Месхетии) Идой Пановной Манденовой в 1944 году. Травянистое двухлетнее растение, монокарпик (размножается единожды за время жизни), с высокой адаптационной изменчивостью, коротким периодом вегетации, приспособленностью к короткому световому дню, повышенной радиации и гипоксии, среди борщевиков других видов он выделяется размерами. Генеративный побег борщевика Сосновского поднимается на 2–6 м в высоту, диаметр главного зонтика достигает 1,3 м, диаметр розетки листьев доходит до 3 м. Борщевик Сосновского легко приспосабливается даже к условиям Заполярья. Он влаголюбив, предпочитает плодородные легко- и среднесуглинистые, супесчаные почвы, плохо, но растет на бедных, кислых и неплодородных почвах, где имеет значительно меньшие размеры.
Борщевик Сосновского как высокоурожайная кормовая и силосная культура, богатая протеином, витаминами, микроэлементами, сахарами, обеспечивающими хорошую силосуемость, привлек многие хозяйства в разных регионах страны. Урожайность зеленой массы борщевика в Нечерноземной зоне была много выше таковой для кукурузы. Многолетнее использование плантаций борщевика (отсутствие ежегодных вспашек, внесения удобрений и прочих применяемых затратных агроприемов) и, следовательно, дешевизну его возделывания по сравнению с традиционными кормовыми культурами оценили многие животноводческие хозяйства.
Началось его селекционное улучшение, и к началу 1980-х годов были выведены новые сорта борщевика: «Северянин» с низким содержанием кумаринов — в Коми В. М. Мишуровым, безкумариновый «Отрадный БИН-1» на основе борщевика понтийского H. Ponticum — И. Ф. Сацыперовой на научно-опытной базе «Отрадное» Ботанического института им. В. Л. Комарова РАН. Семена этих сортов борщевика ежегодно рассылались килограммами по селекционным и сортоиспытательным станциям для оценки и внедрения в хозяйства, но внедрены они так и не были: помешали политические события конца 1980-х — начала 1990-х годов.
Борщевик, раз попав на поля, стал распространяться и занимать все свободные пространства вокруг и вдоль дорог и далее в лесополосах. Особенно быстро процесс пошел в начале 1990-х годов, когда поля и сельскохозяйственные угодья были заброшены. Спустя 15–20 лет борщевик Сосновского стал настоящим бичом территорий России и бывших республик СССР. Сейчас он занял, по разным оценкам, от 20% до 40% сельскохозяйственных угодий.
Многие годы борщевик Сосновского был предоставлен сам себе и проявился как инвазивный вид, угнетающий природные луговые биоценозы. Он стал угрозой биологическому разнообразию природных ландшафтов. Контролировать его распространение стало актуальной задачей фитосанитарной безопасности России.
В ноябре 2015 года Министерством сельского хозяйства борщевик Сосновского внесен в «Отраслевой классификатор сорных растений». В бюллетене ФГБУ «Государственная комиссия Российской Федерации по испытанию и охране селекционных достижений» (выпуск №6 (176), 2018 год) борщевик Сосновского (районированный сорт «Северянин») исключен из Государственного реестра селекционных достижений, допущенных к использованию. После принятия таких документов борщевик Сосновского следует уничтожать по всей территории его распространения.
Борщевик уникален тем, что способен хорошо расти в климатических условиях северного Нечерноземья, где пшеница и кукуруза растут довольно плохо, а он еще и не требует затрат на посевные работы. Если бы в 2019 году борщевик Сосновского собрали со всех сельхозугодий (что, конечно, невозможно), где он растет (60 млн га), то при его средней урожайности 70 тонн с гектара можно было бы рассчитывать на 4200 млн тонн зеленой массы — это почти 600 млн тонн кормовых единиц! А потребность России в кормах для животноводства и птицеводства зимой 2018/2019 годов составляла около 100 млн тонн кормовых единиц. Количество протеина в борщевике — около половины всех растительных белков, заключенных в мировом урожае зерновых в 2015 году. Белки в борщевике в основном остаются в жмыхе после отжима сока.
Борщевик Сосновского сопоставим по урожайности на силос с кукурузным силосом (70 тонн с гектара против 80 тонн), но существенно превосходит кукурузу по всем значимым кормовым качествам.
Борщевик — важный источник эфирных масел, их содержание в зрелых семенах колеблется от 1% до 5%, иногда 10%, в сырой массе корневищ — до 1%, в зеленой массе (листьях) эфирных масел меньше: не более 0,1%. Всего в пределе (недостижимом, разумеется) можно собрать из российского урожая борщевика порядка 8 тыс. тонн эфирных масел! Это на два-три порядка больше, чем нужно всему мировому рынку.
В надземной части борщевика заключено значительное количество целлюлозы, хотя и не очень высокого качества: около 60% сухой массы, или 9% зеленой массы. В пределе (недостижимом) из борщевика можно получить около 300 млн тонн целлюлозы, вдвое больше потребностей мирового рынка.
Можно также производить из борщевика Сосновского биоэтанол, его прогнозируемая продуктивность при этом рекордная среди всех растений, включая теплолюбивые: в идеале до 25 тыс. литров с гектара. Нынешние рекордсмены, сахарный тростник и сахарная свекла, позволяют производить соответственно 4550 и 5060 литров биоэтанола с гектара.
Так что прежде чем уничтожать, стоило бы попытаться использовать ресурс биомассы борщевика в интересах экономики России.
Кирилл Ткаченко, доктор биологических наук, руководитель группы полезных растений и лаборатории семеноведения Ботанического сада Петра Великого, Ботанического института им. В.Л. Комарова РАН
Сколько воды для моих растений?
Это большой вопрос всех садоводов-любителей!
Слишком много воды может загнить корни некоторых растений или вызвать различные болезни.
Недостаточное количество воды не позволяет плодам хорошо расти или хуже, растение засыхает и может погибнуть.
Магическое число, которое нужно запомнить: 2,5
Либо 2,5 см, либо 1 дюйм воды в неделю для растения.
Очевидно, что у всех растений разные потребности, например, помидоры обычно требуют больше, а чеснок — гораздо меньше.Прекрасные книги по садоводству, такие как книга Бертрана Дюмона, дадут вам общее представление о том, что воды мало, в среднем и много. Смотрите нашу сводную таблицу внизу!
2,5 см, ок, а в литрах? … А что мы подразумеваем под 2,5 см воды? Где это 2,5 см?
Фактически, это в среднем 2,5 см воды в неделю для растения, что на самом деле представляет собой 2,5 см воды (по высоте), умноженное на приблизительную площадь 30 см на 30 см. см. Это дает нам 2250 кубических сантиметров воды, или 2.25 литров воды в неделю! Это много воды, вы, вероятно, захотите поливать в 2-3 раза меньшим количеством воды за раз.
Много растений в горшке или огороде?
Не нужно рассчитывать для всех растений индивидуально! Это довольно просто, мы просто рассчитываем общую площадь горшка, приблизительно, или площадь кухни (например, огород). Примеры расчетов ниже!
Растение или горшок VS целый огород
Если я помещаю тонны растений на небольшой участок, почему бы мне не рассчитать количество воды на одно растение, а не на площадь, как предлагается?
Вода, отданная небольшому растению, земле или горшку, частично теряется из-за стока и испарения.Фактически, среднее измерение 2,25 литра в неделю учитывает потери. Однако чем больше растений на небольшом пространстве, тем меньше воды будет потеряно, потому что чем больше корней будет для сбора воды, тем больше будет листвы, чтобы удерживать влагу на земле и предотвращать испарение. Таким образом, вы можете в течение всего сезона (кроме случаев, когда ваши растения находятся в состоянии рассады или мелкой рассады) доверять вам предложенный расчет воды.
Пример №1) Красный перец
30 x м x 30 см x 2.5 см = 2250 см3, значит 2,25 литра в неделю.
Пример № 2) Маленький балконный поддон размером 1 м на 40 см
100 см X 40 см X 2,5 см = 10 000 см3, то есть 10 литров в неделю
Пример № 3) Огород размером 4 на 4 дюйма
122 см X 122 см X 2,5 см = 37210 см3, то есть 37 литров в неделю.
Сводка на этапе
1) Посевная площадь (площадь в см2) рассчитана
2) Умножьте на 2,5 см, чтобы получить объем воды. Результат в см3.
3) Объем берем в см3 и переводим в литры, чтобы было практичнее! Конвертер Google cm3 в литрах
Тогда возникает вопрос: какие капельницы выбрать в соответствии с потребностями моих растений в воде и как долго должен длиться полив? Посмотрите билет, выберите его капельницы и время полива.
Сколько воды давать вашим растениям
Теперь давайте приступим к делу, поняв и приняв пару ключевых моментов
и практических правил.
1. Начало
Для начала, корневых систем травянистых растений требуют около 100% влажности , в идеале, всегда, иначе кончики корней отмирают. Кончик корня — это очень маленький конец корня, который разделен на три зоны. Длина варьируется и зависит от многих факторов, таких как сорт растений , температура, прошлый уровень воды и многое другое. Кончик корня отвечает за поглощение подавляющего большинства минералов и воды. Корневые волоски способствуют этому поглощению и находятся в последней или третьей зоне.После третьей зоны ткань корня одревесневает и становится более непроницаемой для воды и питательных веществ. Убейте кончики, и корень должен восстановить одну, прежде чем идти вперед.
2. Корневая зона
Корни растут в ответ на зон истощения . Это области, где корень впитал все минералов и воды, находящихся там. Когда материал не заменяется, корень расширяется, чтобы найти больше. Корни должны расти. Когда питательных веществ и воды много, корневая система не развивается в равновесии с побегами, и возникает состояние с ограничением углеводов, что ослабляет растение.Дайте растениям время высохнуть и таким образом израсходуйте присутствующие минералы. И наоборот, если вы держите их слишком сухими, может проявиться состояние, известное как хроническое состояние под водой или недокорм . Кончики корней также отмирают, ограничивая дальнейшее развитие растений (рисунок 1-3).
Рисунок 1-3 Хорошие прочные корни кокоса
3. Держите все стоки открытыми
Рисунок 1-4 Профиль глубины орошения
и тип почвы
Избыточный полив — это держать корни погруженными в воду, не давая им доступа к кислороду .Это больше зависит от времени и дренажа, а не от объема. За возможным исключением глубоководной культуры , приятная вещь, но бесполезная для всех, кроме самых опытных гроверов. Никогда не позволяйте корням оставаться в воде более чем на 20 минут, так как даже в этом случае вы получите некоторое их отмирание. Помните, что корням для выполнения своей работы необходим кислород, который распространяется через поверхность корня.
Хорошо дренированная среда может поливать воду в течение более длительного периода (время ВКЛ), потому что избыток быстро стекает из среды, когда применение прекращается.Плохо дренированная среда требует гораздо более короткого времени применения (но норма внесения должна быть медленнее для впитывания), потому что потребуется больше времени, чтобы слить лишнюю воду с поверхности корня. Очень плохо дренированная среда невозможна, потому что скорость нанесения должна быть медленной для впитывания, а со временем дренажа нельзя полностью поливать (рис. 1-4).
4. Определение состояния корня
Общее практическое правило для определения здоровья корней и потребностей в орошении системы состоит в том, что на 1 квадратный метр столешницы, покрытой листьями, потребуется 4-6 литров воды в день.Новые растения, или если квадратный метр не полностью покрыт листьями, будут использовать в среднем около 3 литров в день. Это верно независимо от того, есть ли 2 или 20 растений на квадратный метр. Постройте систему, чтобы можно было подавать это количество при каждом поливе и на протяжении всего времени, в течение которого вы хотите, без дополнительного перемешивания. Используйте эту цифру, чтобы решить, насколько хорошо растения работают. Если он использует меньше, возможно, корни переживают тяжелые времена, или влажность слишком высока, или температура слишком низкая, и так далее.
5. Круговорот воды
При вычислении круговорота воды для урожая, состоящего из более чем одного растения, основывайте свое время на среднем значении для всех растений . Например, мы хотим поливать большинство сред (кроме аэропоники), когда около 50% общего объема воды использовано или исчезло. Настройте автоматические системы на включение, когда будет готово 50% урожая. Для этого сохраните все по-прежнему; средний, возраст и размер растений, освещенность, воздушные потоки и т. д. Прежде всего, поддерживайте одинаковое развитие урожая.
6. Взвешивание
Рисунок 1-5 Масса только что политая
Для органической или инертной среды воды, когда 50% воды, которую вы использовали в прошлый раз, исчезло . В некоторых случаях производитель может взвесить контейнер до костей насухо, полить до начала дренажа и снова взвесить. Разница в том, сколько воды вмещает емкость. Вода, когда шкала достигает половины этого количества, теряется. После посадки то же самое будет происходить и на ранних стадиях. К тому времени гровер также должен увидеть, что растение также набирает вес, поэтому, если вы продолжаете взвешивать, не забудьте принять во внимание увеличившийся вес ваших растений (рис. 1-5, 1-6). !
7.Влажность
Аэропонная система требует от вас уметь определять, когда поверхность корня только что потеряла свободную влагу на ней, при этом не опускается ниже 100% влажность (воздух). Вам придется постоянно следить за этим, особенно там, где корни находятся на открытом воздухе.
8. Хранить корни в темноте
Рисунок 1-6 Теперь вода! вес
Корни любят находиться в темноте и очень стараются отрасти от света. Не допускайте попадания света на них в таких системах, как тонкостенный ПВХ или воздушная камера.
9. Никогда не бывает слишком много воды
Помните, что в емкость со средними и дренажными отверстиями вы не можете налить слишком много воды . Например: у вас есть горшок на 9 литров, независимо от того, вносите ли вы 5 литров или 40 литров в течение 5 минут (если среда не смывается), в емкости всегда останется то же количество, что и десять. минут спустя. Это единственный важный момент.
10. Не поливать на ночь
Циклы полива необходимо отрегулировать в «ночное время», потому что растения не потребляют столько воды, сколько в «дневное время».Не забывайте, что темный цикл имеет решающее значение для развития растений . Это верно для пасмурных дней или периодов высокой влажности. Среды, содержащие много воды, такие как торф или минеральная вата , почти никогда не нуждаются в поливе в ночное время. Но не забудьте настроить цикл полива на полив в последние или первые полчаса света. Аэропоника или глиняная галька нужно нечасто поливать в течение ночи.
Подробнее в сопроводительной статье; Мысли о поливе растений.
Каннабис — Master Plant-Prod Inc.
Прорастание и начало рассады (1 неделя)
Нанесите Plant-Prod MJ ™ Boost из расчета 0,5 г на 1 литр (75 частей на миллион N) один или два раза, чтобы обеспечить достаточное количество фосфора. уровни. Это даст хороший первоначальный толчок корням.
Вегетативный рост (2-3 недели)
Освещение во время этой фазы обычно составляет 18-24 часа. Внесите удобрение Plant-Prod MJ ™ Grow из расчета 0,8–1,2 г на 1 литр (100–150 частей на миллион N) при постоянном графике кормления.
Если уровень EC упадет ниже 1, увеличьте подачу до 200 ppm N. Контролируйте EC и pH в течение всего цикла выращивания.
Вращение с Plant-Prod MJ ™ Cal Kick рекомендуется кормление каждую секунду. Требование к этой добавке должно определяться результатами пробы воды, предоставленными вашим торговым представителем Plant-Prod.
Bud Set (неделя 4)
Освещение следует включить на 12 часов и на 12 часов в темноте. Чтобы помочь растениям завязать почки, или когда бутоны размером с горошину, подкормите один или два раза Plant-Prod MJ ™ Boost из расчета 1 г на 1 литр (150 ppm N).При необходимости продолжайте вращение с помощью Plant-Prod MJ ™ Cal Kick .
Калибровка бутонов (5-10 неделя)
Освещение должно продолжаться после 12 часов работы и 12 часов темноты. Начните непрерывную подачу с Plant-Prod MJ ™ Bloom из расчета 1–1,5 г на 1 литр (100–150 частей на миллион N). Это будет способствовать полному завязыванию бутонов и улучшит их наполнение. При необходимости продолжайте вращение с помощью Plant-Prod MJ ™ Cal Kick .
Финишная обработка (11-14 недели)
Финишер Plant-Prod MJ ™ поможет с финишной обработкой растений при нанесении на 0.65 г на 1 литр (25 частей на миллион N, 200 частей на миллион P 2 O 5 ). Более высокое содержание фосфора и калия принесет пользу растениям на репродуктивной стадии и вплоть до завершения. Перейдите на чистую воду за 14 дней до сбора урожая.
Any Stage (неделя 1-14)
Plant-Prod MJ ™ Spike (CaMg) можно использовать на протяжении всего производственного цикла вместе с любым составом Plant-Prod MJ TM , смешанным в отдельном резервуаре . Этот полностью хелатный состав, содержащий кальций (Ca) и магний (Mg) в соотношении 2: 1, исключает риск нарушения формирования бутонов, завязывания и калибровки.Норма должна определяться по результатам пробы воды. Проконсультируйтесь с вашим торговым представителем Plant-Prod для правильного использования.
EC в гидропонике | Почему это важно
EC означает электрическую проводимость, которая измеряет способность материала проводить электричество. Несмотря на то, что большинство производителей знакомы с измерением количества корма, которое они должны давать, в унциях на галлон, граммах на литр или любых других используемых единицах измерения, ЕС идет немного дальше этого. При выращивании важно хорошо понимать, что такое EC и его значение для производителя.
Питер Клаассен Исследование CANNA
Электропроводность
Измеритель ЕС измеряет потенциал электрического тока, переносимого через воду, известный как молярная проводимость (электролитическая проводимость) и выражается в сименсе (S). Электроны текут от одного набора электродов к другому в воде через пространство не из-за молекул воды, а из-за ионов в воде. Ионы переносят электроны и ограничивают количество электронов, которые могут путешествовать в пространстве, числом доступных или способных переносить ионов; чем выше концентрация, тем больше расход.Чистая вода сама по себе является плохим проводником, поэтому счетчик ЕС будет показывать 0,0 в дождевой воде, воде обратного осмоса или деминерализованной воде. Напротив, соленая морская вода — гораздо лучший проводник.
Когда мы добавляем в воду питательные вещества (соли), мы увеличиваем молярный проводящий потенциал для тока через воду и, таким образом, увеличиваем значение ЕС (или CF = EC * 10). Все измерения проводимости напрямую зависят от температуры и требуют компенсации.
Блок
ЕС может быть выражен с использованием ряда различных единиц, но типичной единицей измерения является сименс на квадратный метр на моль (См / м2 / моль) или миллисименс на сантиметр (мСм / см).Единица измерения мСм / см обычно используется в Европе в качестве ориентира для определения концентрации питательных веществ в воде. В Северной Америке электропроводность преобразуется в количество ионов в воде в частях на миллион (которые также могут быть выражены во многих единицах, включая ppm, мг / л и т. Д.). Это делается путем преобразования ЕС в значение, основанное на знании содержания ионов в растворе. К счастью, существует фиксированный расчет отношений между этими единицами, который приведен в таблице ниже.
Соль
Вода, содержащая минеральные соли, имеет ЕС, но не все измеренные значения ЕС указывают на присутствие ценных питательных солей для растений.Водопроводная вода может содержать натрий и хлорид, которые имеют значение ЕС, но не имеют питательной ценности при нанесении на растения.
Удобрения, конечно же, состоят из пищевых солей. Пищевая ценность, которую мы добавляем в воду, известна как EC +, и ее следует добавлять к EC воды. Вот как мы измеряем общую ЕС в нашем кормушке. Пищевые соли — это твердые вещества, которые извлекаются из земли или выделяются в процессе промышленного крекинга. Мы растворяем определенную массу (граммы) солей в определенном объеме (литрах) воды, и поэтому мы также можем использовать граммы или литры для единицы EC.Хотя каждое удобрение имеет свою ценность удобрения, можно обобщить и сказать, что ЕС 1,0 мСм / см содержит до 1,0 грамма измеренных солей на 1 литр воды.
Впитываемость
Соль имеет свойство притягивать к себе воду, этот процесс известен как гидролиз. Кастрюля с солью, помещенная в погреб, снизит там влажность воздуха. В растворе концентрация солей всегда будет пытаться уравновеситься в двух различных областях концентраций путем движения воды в область более высокой концентрации.Эта разница в концентрациях известна как градиент водного потенциала. Это свойство также играет роль в нашем выращивании с помощью процесса, известного как осмос, который включает полупроницаемый барьер, который позволяет воде проходить, но ограничивает движение ионов или солей.
Когда мы даем много питательных веществ (высокая ЕС), питательные соли притягивают к себе воду в субстрате. Это затрудняет извлечение воды из субстрата корнями. Таким образом, мы даже можем создать условия во влажном субстрате, в которых корни больше не могут извлекать больше воды из субстрата.Это называется «физиологически сухим» субстратом. Это приводит к тому, что у растений больше нет воды, доступной для испарения (испарения), чтобы охладиться от тепла (= света). Хотя это обычно называют чрезмерным внесением удобрений, на самом деле это недостаток воды. У срезанных цветов, таких как розы, или черенков, более высокая EC в вазе или заглушке для черенка может буквально вытягивать воду из стеблей.
Мы можем увидеть этот осмотический процесс в U-образной трубке, когда мы разделим две стороны проницаемой мембраной, такой как кусок стебля.Если мы теперь добавим немного соли с одной стороны, уровень воды с этой стороны повысится, потому что вода с более низким EC будет притягиваться к нему. Вот почему мы рекомендуем очень мало или совсем не употреблять питательные вещества.
Соль притягивает молекулы воды. Когда вы добавляете соль в воду в правой половине трубки (тем самым увеличивая значение ЕС), молекулы соли будут притягивать молекулы воды с левой стороны, в которой меньше соли. Уровень воды на правой стороне поднимается до тех пор, пока значения ЕС (концентрации соли) на обеих сторонах снова не станут равными.
Повышение пищевой ценности
После того, как растительный материал взят, мы должны попытаться как можно быстрее повысить осмотическую ценность растения (ЕС). Поскольку растение увеличивается в объеме и поглощает воду, это осмотическое значение падает. Питание в растении перераспределяется, и само растение становится мягким и более светлым. Это делает его очень восприимчивым к обезвоживанию (увяданию), потому что вода может легко покинуть растение.
Чем больше питание корням, тем больше будет их рост.Поскольку вода, которая используется в качестве транспортного средства, испарилась, питательные соли останутся в растении, и это повысит внутреннюю ЕС (осмотическую ценность). Поскольку он был повышен, производитель может снова повысить ЕС корням.
Сильные растения
Благодаря достижению этой положительной спирали накопления ЕС в растении, растение также становится более способным поглощать воду и удерживать ее. Из-за этого растение не позволяет воде испаряться очень легко, поэтому оно не теряет воду, которую впитало слишком быстро.Для слишком мягких растений необходимо уменьшить интенсивность света или сократить количество часов освещения, чтобы предотвратить его нехватку в конце дня.
Несмотря на то, что EC играет важную роль в этой истории, это не единственный фактор, который имеет здесь влияние. Полный контроль климата вокруг завода влияет на процессы, частью которых является ЕС.
Потребности в питании
Наращивание ЭК в растении и, следовательно, в субстрате должно производиться с учетом требований роста растения.Этот спрос контролируется ассимиляцией. Чем больше вы выращиваете растение, тем больше ему потребуется питательных веществ. Эти питательные вещества частично заблокированы в растении и превращаются в полезные аминокислоты, масла, жиры и т. Д., Но есть также часть, которая остается в соке растения, и это определяет внутреннюю EC. Калий — один из важнейших элементов питания в этом процессе.
Когда растение завершит вегетативный рост, оно все еще может поглощать много калия, обеспечивающего внутреннее осмотическое значение, и яичники.Яичники — это не оплодотворенное «семя». Однако этому возрастающему потреблению тоже приходит конец. Прибл. 60% цикла выращивания растение будет иметь запас питательных веществ, находящихся в субстрате. Теперь для производителей начинается игра в стихи о питательных веществах, применяемых с применением ЭК.
EC запас в банке
Мы можем использовать принцип «ведра», чтобы лучше разобраться в этой игре.
Вода в субстрате испаряется, а соли — нет.Поэтому в последние недели роста вам следует — в большинстве случаев — прекратить подкармливать растение и добавить только воду. Потому что, если в субстрате недостаточно воды, значение ЕС (концентрация соли) может резко возрасти.
Пример:
У нас есть ведро с 10 литрами раствора удобрений с ЕС 2,0 мСм / см. Это означает, что в ведре содержится 20 граммов пищевых солей (питательный бульон). (2,0 г / л Х 10 литров). Когда 9 литров воды испаряются, остается 1 литр воды с ЕС 20 (ЕС = 20 граммов соли в 1 литре воды).На самом деле он никогда не будет таким экстремальным, и при культивации с использованием почвы существует дополнительный процесс буферизации, который до некоторой степени связывает питательные соли с частицами органического субстрата, но принцип все еще остается в силе. Добавление 9 литров доводит ЕС до 2,0 мСм / см. Таким образом, если нам нужно поддерживать ЕС в диапазоне от 2 до 4 мСм / см, мы должны пополнить воду на удаленных 5 литрах. (4 г / л x 5 литров = 20 г, EC = 4 мСм / см)
Если в ведре есть растение, которое поглотило 5 граммов раствора, мы можем долить это количество, когда даем воду, если нам нужно поддерживать 2.0 EC. Если доза воды составляет, например, 5 литров, мы должны дать 5 граммов, или, короче говоря; доза воды 5 литров с ЕС 1,0 (гр / л) или мСм / см. Цель здесь и при выращивании — поддерживать ЕС в рабочем состоянии.
Это основная предпосылка внесения удобрений. Мы стараемся поддерживать в контейнере определенный уровень плодородия, который обеспечивает достаточное количество питательных элементов для растений. Вообще говоря, в финальном периоде мы должны снизить ЕС. С системой, которая может быть осушена, мы можем сами уменьшить запас питательных веществ, промывая ее с низким уровнем EC.Основание в дренажных системах можно исправить намного лучше. В системах без дренажа кормовой запас постоянно добавляется с последующим внесением корма. Рано или поздно этот питательный запас достигнет столь медленного уровня, затем прекратит способность растения впитывать воду, а затем фактически заставит воду выходить из тканей растения в обратном порядке.
Сводка
EC является не только устройством для измерения количества удобрений, вносимых в растения, но и механизмом климат-контроля, который связан с водопоглощением.
Растения следует начинать с низкой ЕС, которую затем нужно как можно быстрее наращивать, чтобы обеспечить потребности растений в питательных веществах, а также повысить внутреннюю осмотическую ценность для создания сильных растений.
Растение практически не требует дополнительного питания в последние недели выращивания. Мы продолжаем обеспечивать питание только для того, чтобы поддерживать запасы питательных веществ в горшке и поддерживать стабильный уровень ЕС. Обычно это приводит к снижению ЕС или даже к еженедельной промывке (выщелачиванию).
Уровни PPM для растений каннабиса
Уровни PPM для растений каннабиса
Уровни
PPM (частей на миллион) — это мера содержания питательных веществ в воде, используемой для подкормки растений каннабиса. В водопроводной воде, которую вы будете использовать для полива растений, есть минералы, и вы будете добавлять в воду некоторые растворы удобрений, которые также можно измерить в частях на миллион.
PPM — это довольно простая для понимания концепция, однако достижение правильного баланса между PPM и pH может оказаться непростой задачей.
Насколько мала одна часть на миллион?
Представьте себе сплошное серое изображение размером 1000 x 1000 пикселей. А теперь представьте, если бы 1 пиксель был серебристым. Это 1 серебряный пиксель среди 999 999 серых пикселей. Один серебряный пиксель равен 1 PPM.
Что касается воды, 1 PPM — это 1 миллилитр на 1000 литров воды. В 1000 литров воды содержится 1 000 000 миллилитров. Один миллилитр — это примерно 20 капель воды или 0,05 мл. Это означает, что в литре примерно 20 000 капель воды.
В середине периода цветения растения каннабиса любят около 1000 PPM.Это упрощает матч. Если 1 PPM составляет 1 мл на 1000 литров, то PPM 1000 означает 1 мл на 1 литр. Вот и все. В середине цветения около 1 мл лейки на 1 литр воды является питательными веществами. Остальные 999 мл — вода.
Статьи по теме:
Узнайте о конопле NPK
Таблица pH и руководство конопли
pH и PPM
pH играет огромную роль в концентрациях PPM. PPM может быть точным, но если pH отключен, PPM становится бессмысленным, потому что растения не могут усваивать необходимые им питательные вещества.Посевы каннабиса переносят питательные вещества через стебли, как и все листовые культуры. Корни — это пористые структуры, извлекающие из почвы питательные вещества и воду. Затем вода и питательные вещества используются растением для производства пищи путем фотосинтеза. Эти блюда влияют на все структурные элементы растений каннабиса от листьев до цветов и каннабиноидов.
Как и люди, растения могут питаться только определенным количеством пищи каждый день. Если они перекормлены, растение может быть повреждено из-за слишком большого количества определенного элемента, корни блокируются, а растение покоится, когда оно окружено пищей.
Именно здесь на помощь приходит PPM. На протяжении всей жизни растения каннабис имеет определенные потребности в питательных веществах. Для каждого этапа разработки существует оптимальный уровень PPM. Использование TDS или EC-метра для измерения PPM — это точный способ убедиться, что ваши растения получают именно правильное количество питательных веществ, и не допустить, чтобы они впитали слишком много неправильного материала.
Регулировка PPM и pH может быть сложной задачей. Когда вы настроите один, другой выйдет из строя.Как показывает практика, более важно, чтобы уровни pH были правильными, чем уровни PPM. Так что, если вы расстраиваетесь, пытаясь набрать и то и другое, соглашайтесь на то, чтобы pH был точным, а PPM немного отклонялся.
Например, предположим, что растение находится на поздней стадии вегетации. Вероятно, вы хотите, чтобы PPM составлял около 600. Вы определенно хотите, чтобы pH составлял 5,8 — 6,3 (ниже для воды, выше для почвы). Если вы получите смесь с концентрацией 800 частей на миллион и pH 6,0, это нормально. Однако если вы получите значение PPM 600 и pH 5.3 вы на грани отравления растения.
Вот список рекомендуемых уровней PPM для различных стадий развития растения каннабис.
PPM Уровни для Cannabis Chart
Стадия рассады: 100-400
Питательные вещества на самом деле не нужны на стадии рассады. Немного корневого сока всегда полезно.
Ранняя вегетационная стадия: 500-800
Сюда входят клоны. На этом этапе основным питательным веществом является азот.
Поздняя вегетационная стадия: 800-1200
Растениям требуется смесь N-P-K мышей.Смешивание раствора для выращивания / овоща и раствора для цветения / цветения — хороший способ получить сбалансированный N-P-K, который вы хотите в конце вегетативной стадии.
Ранняя стадия цветения: 1000-1400
В этот момент растение каннабис вырастет. Потребность в азоте начинает уменьшаться, а потребность в фосфоре — увеличиваться.
Стадия среднего цветения: 1200-1600
Это стадия, когда растение каннабиса нуждается в наибольшем количестве пищи. Поддержание умеренного уровня азота при повышении уровня фосфора и калия для ускорения роста цветов.
Позднее цветение: 1000-500-0
Позднее цветение начинается с уменьшением PPM. В течение недели созревания PPM может быть около 500. Наконец, PPM снижается до нуля. Это флеш. Растения получают только воду, чтобы очистить их системы от всех химикатов. Этот прилив улучшает вкус и уменьшает резкость.
Когда поливать овощи для получения наилучшего урожая
Вода необходима для роста овощей. Овощи в основном состоят из воды: кукурузный початок на 70 процентов состоит из воды, картофель на 80 процентов состоит из воды, а помидор на 95 процентов состоит из воды.Овощи не будут расти и давать урожай без постоянного, даже полива.
Когда поливать овощи
Чтобы узнать, когда вашему саду нужна вода, пощупайте почву и посмотрите на растения.
- Если почва влажная и липкая, если она образует шар в ладони, когда вы сжимаете кулак, поливать не нужно.
- Если почва не держится в руке, крошится и течет между пальцами, значит, она слишком сухая, и пора поливать.
- Когда растения вянут и выглядят обвисшими утром, пора поливать.
Лучшее правило — поддерживать равномерное увлажнение овощей и фруктов: Если вы воткнете палец в землю, и она высохнет, пора поливать. Если он останется мокрым, подождите день или два, прежде чем снова поливать. Если он уходит влажным, не сухим и не блестящим, почва равномерно влажная.
Излучатели капельного орошения могут регулировать количество галлонов воды, подаваемой на каждое растение.
Критические времена для каждого урожая для правильного полива овощей
- Спаржа: во время развития и выращивания копья и во время развития папоротника; когда папоротник достигает полного размера, требуется меньше воды.
- Бобы сухие: во время опыления, цветения и развития стручков; соцветия могут опадать, а стручки не увеличиваться в размерах, если полив недостаточен; ¾ галлона (2,8 литра) в неделю на фут ряда.
- Бобы, щелкунные: во время опыления, цветения и развития стручков; соцветия могут опадать, а стручки не увеличиваться в размерах, если полив недостаточен; 1 галлон (3,7 литра) в неделю на фут ряда.
- Бобы, лима: во время опыления, цветения и развития стручков; соцветия могут опадать, а стручки не увеличиваться в размерах, если полив недостаточен; 1 галлон (3.7 литров) в неделю на фут ряда.
- Свекла: равномерно, равномерно поливайте в течение всего вегетационного периода и особенно во время развития корней, чтобы избежать трещин, узловатых корней и острого аромата — симптомов водного стресса; 1 галлон (3,7 литра) в неделю на фут ряда или квадратный ярд.
- Брокколи: постоянная равномерная влажность в течение всего вегетационного периода, особенно в начале, чтобы предотвратить застегивание пуговиц и во время развития кочанов; 1 галлон (3,7 литра) в неделю на фут ряда.Качество будет снижено, если растения в любой момент засохнут.
- Брюссельская капуста: постоянная равномерная влажность в течение всего вегетационного периода, особенно в начале, чтобы предотвратить застегивание пуговиц и во время развития кочанов; 1 галлон (3,7 литра) в неделю на фут ряда.
- Капуста: постоянная равномерная влажность в течение всего вегетационного периода; 1½ галлона (5,6 литра) на растение в неделю или 12 дюймов (30 см) за сезон. Слишком много воды во время развития головы может привести к расколу головы; продолжайте поливать даже.
- Мускусная дыня: во время цветения, завязывания и развития плодов; 1,5 галлона (5,6 литра) на растение в неделю или 18 дюймов (45 см) за сезон.
- Морковь: равномерно, равномерно поливайте в течение всего вегетационного периода и особенно во время развития корней, чтобы избежать трещин, узловатых корней и острого аромата — симптомов водного стресса; ¾ галлона в неделю на фут ряда или 18 дюймов (45 см) за сезон.
- Цветная капуста: постоянная равномерная влажность в течение всего вегетационного периода, особенно рано, чтобы предотвратить застегивание пуговиц и во время развития кочана; 1 галлон (3.7 литров) на растение в неделю. Качество будет снижено, если растения в любой момент засохнут.
- Сельдерей: постоянная влажность в течение всего сезона; сельдерей неглубокий и нуждается в частом поливе; 2–3 галлона (7,5–11 литров) на квадратный ярд в неделю, 9 дюймов (22 см) за сезон.
- Листовая капуста: постоянная равномерная влажность в течение всего вегетационного периода; 1½ галлона (5,6 литра) на растение в неделю или 12 дюймов (30 см) за сезон. Качество ухудшается, если растения в любой момент засыхают.
- Овощи холодного сезона: поддерживают равномерное увлажнение культур прохладного сезона в теплую погоду или жару.
- Коул: постоянная равномерная влажность в течение всего вегетационного периода и особенно во время развития колосьев, но не прорывы воды, которые могут вызвать раскалывание колосьев; 1½ галлона (5,6 литра) на растение в неделю или 12 дюймов (30 см) за сезон. Качество ухудшается, если растения высыхают.
- Кукуруза: кукуруза требует постоянного равномерного полива; вода имеет решающее значение для шелковки, кисточки и развития ушей.Поливайте, когда кисточки на маленьких початках начнут сморщиваться, и за 10 дней до сбора початков. Водный стресс может привести к тому, что кисточки сбрасывают пыльцу до того, как шелк на колосьях будет готов для опыления; отсутствие опыления может привести к отсутствию ряда зерен и снижению урожайности.
- Огурцы: ровный, постоянный полив во время развития бутонов, цветения, развития плодов; 1½ галлона (5,6 литра) на растение в неделю или 25 дюймов (63 см) за сезон.
- Баклажаны: равномерный, постоянный полив от цветения до сбора урожая; 1½ галлона (5.6 литров) на растение в неделю или 18 дюймов (45 см) за сезон.
- Фруктовые деревья: ровный полив во время цветения и еще раз перед уборкой урожая, когда рост плодов наиболее быстрый.
- Плодоносящие овощи: постоянный, равномерный полив требуется во время цветения и по мере того, как фрукты начинают набухать; это увеличит урожай.
- Прорастающие семена: часто поливайте, чтобы почва оставалась влажной, но будьте осторожны, чтобы не смыть семена.
- Зелень: постоянная равномерная влажность в течение всего сезона; листовые культуры имеют неглубокую корень и нуждаются в частом поливе; 1 галлон (3.7 литров на фут ряда или от 2 до 3 галлонов (7,5-11 литров) на квадратный ярд в неделю, 9 дюймов (22 см) за сезон; там, где затруднен регулярный полив, делайте обильный полив 4 галлона на квадратный ярд каждые 10 дней.
- Травы: сохраняет почву влажной, а не влажной; травы лучше всего потребляют меньше воды; подождите, пока они начнут увядать; Максимум 1½ галлона (5,6 литра) на растение в неделю.
- Кале: постоянная равномерная влажность в течение всего вегетационного периода; 1½ галлона (5.6 литров) на растение в неделю или 12 дюймов (30 см) за сезон. Качество ухудшается, если растения в любой момент засыхают.
- Кольраби: постоянный, равномерный полив в течение всего вегетационного периода и особенно развитие стебля, чтобы избежать трещин, узловатых корней и острого аромата — симптомов водного стресса; 1 галлон (5,6 литра) в неделю на фут ряда или квадратный ярд.
- Листовые культуры: постоянная равномерная влажность в течение всего сезона; листовые культуры имеют неглубокую корень и нуждаются в частом поливе; 1 галлон (3.7 литров на фут ряда или от 2 до 3 галлонов (7,5-11 литров) на квадратный ярд в неделю, 9 дюймов (22 см) за сезон; там, где затруднен регулярный полив, делайте обильный полив из расчета 4 галлона (15 литров) на квадратный ярд каждые 10 дней.
- Салат: постоянная равномерная влажность в течение всего сезона; салат имеет мелкую корень и требует частого полива; 1 галлон на фут ряда или от 2 до 3 галлонов (7,5-11 литров) на квадратный ярд в неделю, 9 дюймов (22 см) за сезон; там, где затруднен регулярный полив, делайте обильный полив 4 галлона на квадратный ярд каждые 10 дней.Не допускайте высыхания рыхлых головок или айсбергов во время развития головы.
- Дыни: во время цветения, завязывания и развития плодов; 1½ галлона (5,6 литра) на растение в неделю или 18 дюймов за сезон.
- Лук: луковицы имеют небольшую корневую систему; полив критичен при увеличении луковиц; 1 галлон (3,7 литра) на фут ряда в неделю или 15 дюймов (38 см) за сезон. Прекратите полив, когда опадут верхушки.
- Пастернак: равномерно, равномерно поливайте в течение всего вегетационного периода и особенно во время развития корней, чтобы избежать трещин, узловатых корней и острого аромата — симптомов водного стресса; 1 галлон (3.7 литров) в неделю на фут рядка или квадратный ярд.
- Горох: во время цветения, увеличения семян и заполнения стручков; 1 галлон (3,7 литра) на фут ряда в неделю или 18 дюймов за сезон.
- Перец: равномерный, постоянный полив от посадки до завязывания и увеличения плодов; 1 пинта на растение в неделю в молодом возрасте, увеличиваясь до 1,5 галлона (5,6 литра) на растение в неделю по мере того, как становится теплее.
- Картофель: Лучше всего ровный, постоянный полив, особенно во время завязывания клубней и их увеличения; клубни станут бугорчатыми, если они высохнут во время развития клубней.Неравномерный полив в конце сезона может вызвать раскол клубней.
- Редис: равномерно, равномерно поливайте в течение всего вегетационного периода и особенно во время развития корней, чтобы избежать трещин, узловатых корней и острого аромата — симптомов водного стресса; ¾ галлона в неделю на фут ряда или квадратный ярд.
- Корнеплоды: равномерно, равномерно поливайте в течение всего вегетационного периода и особенно во время развития корней, чтобы избежать трещин, узловатых корней и острого аромата — симптомов водного стресса; 1 галлон (3.7 литров) в неделю на фут рядка или квадратный ярд.
- Брюква: равномерно, равномерно поливайте в течение всего вегетационного периода и особенно во время развития корней, чтобы избежать трещин, узловатых корней и острого аромата — симптомов водного стресса; 1 галлон (3,7 литра) в неделю на фут ряда или квадратный ярд.
- Сеянцы: сохраняют саженцы равномерно влажными, но избегают слишком влажной почвы, которая может вызвать увлажнение; воды, чтобы растение не увядло в раннем возрасте.
- Шпинат: постоянная равномерная влажность в течение всего сезона; шпинат мелкокорневой и нуждается в частом поливе; 1 галлон на фут ряда или от 2 до 3 галлонов (7.5-11 литров) на квадратный ярд в неделю, 9 дюймов за сезон; там, где затруднен регулярный полив, делайте обильный полив из расчета 4 галлона (15 литров) на квадратный ярд каждые 10 дней.
- Кабачок: ровный, постоянный полив во время развития бутонов, цветения, развития плодов; 1½ галлона (5,6 литра) на растение в неделю или 18 дюймов за сезон.
- Сладкая кукуруза: кукуруза требует постоянного равномерного полива; вода имеет решающее значение для шелковки, кисточки и развития ушей. Поливайте, когда кисточки на небольших початках сморщиваются, и за 10 дней до их сбора.Водный стресс может привести к тому, что кисточки сбрасывают пыльцу до того, как шелк на колосьях будет готов для опыления; отсутствие опыления может привести к отсутствию ряда зерен и снижению урожайности.
- Клубника: постоянный, равномерный полив во время цветения и развития побегов.
- Швейцарский мангольд: постоянная равномерная влажность в течение всего сезона; шпинат мелкокорневой и нуждается в частом поливе; 1 галлон (3,7 литра) на фут ряда или от 2 до 3 галлонов (7,5-11 литров) на квадратный ярд в неделю, 9 дюймов (22 см) за сезон; там, где затруднен регулярный полив, делайте обильный полив из расчета 4 галлона (15 литров) на квадратный ярд каждые 10 дней.
- Помидоры: постоянный, равномерный полив важен во время цветения, завязывания плодов и увеличения плодов; 2½ галлона на растение каждую неделю или 24 дюйма (60 см) за сезон. Если растения не мульчировали, может потребоваться больше воды. Старые позднеспелые сорта могут потребовать меньше воды перед урожаем.
- Пересадки: обеспечивают равномерное увлажнение трансплантатов; поливать, чтобы избежать увядания по мере развития и укоренения корней; первые 5 дней критичны.
- Репа: постоянный, равномерный полив в течение всего вегетационного периода и особенно во время развития корней, чтобы избежать растрескивания и узловатых корней и острого аромата — симптомов водного стресса; ¾ галлона (2.8 литров) в неделю на фут ряда или квадратный ярд.
- Виноградные культуры: постоянный, даже во время цветения и плодоношения критически важен равномерный полив.
Полив
галлона и два галлона может помочь измерить доставку воды к каждому растению.
Советы по поливу овощей
• Большинству овощей требуется дюйм воды в неделю. Это примерно 62 галлона (234 литра) на каждые 100 квадратных футов; это количество впитается примерно на 8 дюймов в почву. Используйте дождемер, чтобы убедиться, что ваши культуры получают воду, в которой они нуждаются.Если дождя недостаточно, вы должны восполнить разницу за счет орошения.
• Лучший способ полива — это доставлять воду к основанию растения. : используйте капельное орошение или небольшие траншеи, которые позволят воде стекать и просачиваться в землю. Дождевание и дождевание могут привести к заболеванию листвы, особенно если растения не полностью высыхают до наступления вечера или низких температур.
• Системы капельного и капельного орошения являются наиболее эффективными и могут подавать воду очень близко к корням растений.Эти системы имеют капельные головки, которые могут измерять количество воды, подаваемой в сад. Чтобы измерить полив сверху, поместите 4 или 5 небольших емкостей с прямыми стенками вокруг сада во время полива; когда 1 дюйм собирается в контейнерах, вы доставляете в сад дюйм воды.
• Количество необходимой воды будет зависеть от типа почвы в саду. : глинистая почва будет удерживать больше воды, чем песчаная, и требует меньшего полива. Лучше всего почва, богатая органическими веществами; он удерживает влагу и хорошо дренирует.Овощи, выращиваемые в контейнерах, требуют частого наблюдения и могут потребовать более частого полива.
• Растения со здоровой корневой системой будут нуждаться в поливе каждые 5-7 дней в среднем , если погода не жаркая или ветреная; температура и ветер могут повлиять на водоудерживающую способность почвы.
• Овощи с мелкой корневой системой требуют более частого полива.
• Овощам нужно больше воды в солнечные дни и низкую влажность.
• Лучшее время для полива — утро , поскольку растения начинают использовать воду в течение дня.Полив в дневную жару приведет к потере воды на испарение. Полив вечером может привести к заболеваниям листвы, если листва не высохнет до наступления темноты.
• Вода, когда воздух неподвижен. Полив в ветреную погоду означает большее испарение.
• Перед поливом слегка обработайте вокруг растений — не глубоко; это позволит почве впитывать и удерживать влагу.
• Длительное капельное или капельное орошение позволяет воде медленно и глубоко просачиваться в почву, а не стекать.Полив на глубину от 5 до 6 дюймов способствует росту глубоких корней. Избегайте быстрого неглубокого полива, который способствует неглубокому росту корней. Мелкие корни более подвержены повреждению солнцем и жарой.
• Поливайте до того, как растения станут увядшими и стрессовыми. Когда растения увядают, ущерб уже может быть необратимым. Завядшие утром растения нуждаются в немедленном поливе. Проверяйте влажность почвы каждый день или два, чтобы убедиться, что почва влажная, а не сухая или слишком влажная.
• Не над водой. Слишком много воды может привести к вымыванию питательных веществ из почвы и затоплению растений; Корни растений нуждаются в кислороде из почвы, чтобы помочь растениям расти.
• Мульчируйте вокруг растений, чтобы сохранить влажность почвы. Регулярно добавляйте в почву выдержанный компост и органические вещества. Это повысит влагоудерживающую способность почвы.
• Не позволяйте сорнякам расти в саду. Сорняки конкурируют с овощами за воду и питательные вещества.
• Выращивайте урожай в подходящий сезон. Для культур, выращиваемых в прохладную погоду ранней весной и осенью, требуется меньше воды, чем при выращивании в теплую погоду.
• Убирайте овощи, когда они молодые и только что спелые. Для молодых овощей потребуется меньше воды, они будут нежнее и вкуснее, чем овощи, которые лежат в саду после своего пика.
Также представляет интерес:
Экономия воды: добавление выдержанного компоста в сад
Полив овощей в жаркую и сухую погоду
Полив и содержание воды в овощах
Мульча: защита сада в жаркую погоду
5 лучших советов по поливу растений каннабиса
Поскольку марихуана — это растение, для роста ей нужны вода, питательные вещества, солнечный свет и воздух.Хотя традиционно в качестве посадочной среды используют почву, на рынке существует множество альтернатив. Тем не менее, независимо от среды, правильное увлажнение — это залог успешного роста растений марихуаны. Это особенно актуально, поскольку он на 80% состоит из воды!
Слишком много новичков ошибочно полагают, что поливать их растения легко. Основное преступление против сорных растений — это чрезмерный полив. Почему-то новички также склонны думать, что пропитать урожай необходимо.Если вы добавите слишком много воды, вы рискуете препятствовать поступлению кислорода в растения. Но если вы поливаете растения под водой, они испытывают жажду, и их листья начинают увядать.
У чрезмерно поливаемых растений марихуаны часто опадают листья. В отличие от увядших растений, листья переувлажненных растений настолько пропитаны водой, что скручиваются сами по себе. Помните, что ваш сорняк использует свою корневую систему, чтобы дышать воздухом. Залив эти корни, вы рискуете утопить несчастные растения. Еще один признак переувлажнения — пожелтение листьев.
Обнаружить недополивное растение несложно. Такие растения марихуаны выглядят слабыми, безжизненными и демонстрируют явные признаки увядания. В крайних случаях листья бывают ломкими и при прикосновении кажутся бумажными. Если у вас есть сад каннабиса впервые, продолжайте читать, чтобы узнать больше об оптимальных стратегиях полива.
Лучшие продукты для увлажнения садов конопли
Ниже мы предоставляем вам список полезных продуктов, которые помогут вам правильно поливать растения. Они разработаны, чтобы исключить возможность догадок в процессе и снизить риск недостаточного или чрезмерного полива ваших драгоценных растений.Независимо от того, какой вариант вы выберете, помните, что существуют разные циклы роста. Для каждого из них требуется уникальный график полива.
Вот краткий обзор:
- Стадия проращивания: Для начала лучше всего поливать два раза в день, но сосредоточьтесь на частоте, а не на объеме.
- Вегетационная стадия: Ежедневный полив лучше всего, если вы используете небольшие горшки. Если у вас большие емкости, переходите на полив каждые два дня.
- Стадия цветения: Поливать каждые 2-3 дня.
Что касается размера горшка, вы должны тщательно выбирать контейнер, если хотите правильно увлажнить растения марихуаны. Здравый смысл подсказывает нам, что растение не может потреблять всю воду, если его корни не достигают ее! Если у вас есть емкость, куда не доходят корни, значит, у вас есть остатки воды. Затем эта влага становится мишенью для корневой гнили, насекомых и грибов.
Как правило, начинайте с горшков или кубиков размером один квадратный дюйм каждый. По мере роста растений увеличивайте размер контейнера до четырех квадратных дюймов.В конце концов, вам понадобится горшок на один галлон, затем контейнер на два галлона и так далее. Улучшайте горшок каждый раз, когда ваше растение перерастает его.
Совет №1 — Используйте умные горшки
Эти горшки сделаны из холста, чтобы корни марихуаны могли дышать. Они также позволяют воде стекать и обеспечивают отвод тепла. Умные горшки — распространенный вариант среди комнатных производителей. Некоторые пользователи отмечают, что они высыхают быстрее, чем стандартные контейнеры, потому что через них проходит воздух.Как только вы привыкнете к этой настройке, вы получите огромное удовольствие от использования Smart Pots.
Совет № 2 — Используйте систему капельной линии
Если у вас большой урожай или вы занимаетесь садоводством в жарком климате, система капельной линии может быть вам спасением. Это позволяет вам поливать растения и равномерно распределять жидкость по емкости. Допустим, вы используете перлит и поливаете горшок. Вы обнаружите, что вулканическое стекло поднимается на поверхность, где теряет свою эффективность.
В качестве бонуса контроль частоты полива и количества добавляемой воды помогает регулировать количество питательных веществ.Правильная капельная система будет включать в себя серию небольших трубок и капельниц. Они соединяют ваш источник воды с каждым растением в вашем саду.
Совет № 3 — Добавьте перлит
Хотя это термообработанное вулканическое стекло является экзотическим материалом, оно становится все более популярным в кругах выращивания марихуаны. Обычно его добавляют в питательные среды, потому что он улучшает структуру органических почв. Поскольку это нейтральное вещество, оно не влияет на pH воды или ЕС питательных веществ.
Когда это природное вещество нагревается выше 1400 градусов по Фаренгейту, оно сильно расширяется, превращаясь в перлит, коммерческий материал.Вы заметите, насколько он белый, и вы можете купить его мелкого, среднего и крупного сортов. Если вы используете много питательных веществ в своих растениях, добавьте до 50% перлита. Уменьшите до 20%, если не планируете добавлять большое количество добавок и питательных веществ.
Совет № 4 — Купите таймер
Если вы используете систему капельной линии, вы автоматически используете таймер. Это сокращает объем работы, которую вам необходимо выполнить, потому что система поливает растения по графику. Он также контролирует, сколько воды вы используете.Если у вас есть система с таймером, она обеспечит хороший уход за вашими растениями марихуаны. Вы даже можете выйти из состояния и позволить таймеру сделать свое дело.
Совет № 5 — Посмотрите на другие системы автоматического полива каннабиса
Мы уже упоминали систему капельной линии, которая представляет собой разновидность автоматического полива растений каннабиса. Трудно подчеркнуть, сколько времени и стресса одна из этих систем сэкономит вам. Вы действительно понимаете это только тогда, когда пытаетесь поливать вручную.
Помимо капельного орошения, вы также можете выбрать дождевальный полив. Еще раз, он активируется по расписанию. Вместо того, чтобы подавать воду в каждый горшок по отдельности, спринклерная система распределяет воду по всем растениям.
Было бы упущением утверждать, что системы автоматического полива каннабиса надежны или лишены недостатков. Их нелегко установить, и такая система может оказаться слишком дорогой для небольших домашних производителей. Если вы используете, в частности, капельную систему, вам необходимо регулярно проверять и очищать трубы, чтобы они не засорялись.В противном случае вы рискуете накопить минералы и водоросли, что может затруднить поток воды.
Кроме того, если ваша система подает воду под землю, вы не узнаете, правильно ли она питает ваши растения. Если возникнет проблема, вы не заметите ее в течение нескольких дней, пока ваши растения не начнут проявлять признаки недомогания. Наконец, вы не можете просто настроить систему и оставлять урожай в покое на несколько дней подряд. Важны регулярные проверки на наличие признаков болезней или плохого состояния здоровья.
Как часто следует поливать растения каннабиса, чтобы получить хорошие шишки?
Мы предложили несколько очень общих схем того, как часто следует поливать рассаду, а также растения на стадии вегетации и цветения.Однако не существует «жесткого и быстрого» правила. Все зависит от климата, типа сорта, используемой среды выращивания, а также от того, выращиваете ли вы в помещении или на открытом воздухе.
В целом, немного поливать растения — это «безопасная ставка». В идеале вы достигнете точки, в которой вы замачиваете горшок небольшим количеством воды. Хотя вода должна оставаться на поверхности ненадолго, она должна относительно быстро стекать в питательную среду. Затем вы должны внимательно следить за своими растениями и искать признаки недостаточного или чрезмерного полива.
Что касается , когда будет поливать ваше растение следующим, эксперты согласны. Говорят, что когда вы используете почву, вы должны поливать растения, как только первые несколько дюймов почвы станут сухими. Еще один контрольный признак — если контейнер кажется исключительно легким. Вы регулярно добавляете в воду питательные вещества? Если да, добавьте воды, чтобы получить до 20% стока, стекающего со дна емкости. Этот процесс предотвращает накопление в вашей почве.
Опыт помогает
Если вы знаете о регулярной проверке почвы, вы должны понимать, как часто вам нужно поливать.Вы также узнаете больше о необходимом количестве воды. Поливайте марихуану при первых признаках увядания листьев.
Многие новички полагаются на свою надежную лейку. Это неплохой вариант, когда у вас есть только горстка растений каннабиса, о которых нужно беспокоиться. Однако если у вас большой сад, ваша банка будет слишком мала, чтобы удовлетворить потребность в воде. Вы можете настоять на своем, но это потребует многократных заправок.
Все большее число культиваторов вкладывают средства в такие устройства, как аккумуляторные насосы для перекачки жидкости.Эти насосы позволяют перекачивать воду из большого контейнера к сорнякам. Самые популярные варианты способны доходить до дна 3-галлонного кувшина.
При поливе сорняков следует учитывать и другие соображения.
Мониторинг pH
Даже при правильном поливе некачественный источник воды может свести на нет всю вашу тяжелую работу. Шкала pH варьируется от 0 до 14 и определяет, насколько вещество является кислым или щелочным. 7,0 считается нейтральным, а pH чистой воды находится в пределах этой отметки и около нее.PH воды определяет способность вашего растения поглощать питательные вещества. Для справки, 0–6,9 — это кислота, а все значения от 7,1+ — щелочные.
Путем проб и ошибок производители определили, что растения марихуаны лучше всего растут при pH около 6,5. Вы можете измерить pH, добавив pH-метр к пробе стока воды. Это идеальный вариант, потому что стоки воды прошли через питательную среду и стекают из контейнера. Если pH слишком высокий или низкий, вам необходимо приобрести конкретный продукт.Цель состоит в том, чтобы максимально приблизить его к 6.5.
Частей на миллион (PPM)
PPM измеряет количество минералов, растворенных в вашем источнике воды. Например, значение 115 ppm означает, что в вашем источнике присутствует 115 миллиграммов на литр минеральных веществ. На вегетативной стадии идеальный PPM составляет 500, в то время как на стадии цветения он повышается до 1000. Инвестируйте в счетчик TDS. Он измеряет PPM источника воды и гарантирует, что ваши растения не получают слишком мало или слишком много питательных веществ.
Качество воды
К сожалению, вы можете жить в районе, где качество воды находится под угрозой (Флинт, штат Мичиган, кто-нибудь?). В таком случае вода, которую вы используете для выращивания растений, может содержать бактерии и другие загрязнители. Эти нежелательные добавки могут загрязнить воду. Попытка выращивать растения в таких условиях приведет только к катастрофе.
Чтобы предотвратить катастрофу и потерю бесчисленных часов, денег и энергии, инвестируйте в фильтр обратного осмоса (RO).Эти фильтры удаляют до 99% растворенных в воде солей. В результате ваши растения марихуаны получают максимально чистый конечный продукт.
Заключение: полив растений каннабиса
Если вы никогда раньше не выращивали марихуану, вы будете шокированы тем, сколько усилий уходит на этот процесс. Это не просто их посадка, добавление питательных веществ и полив по своему усмотрению. Есть ряд деталей, которые следует учитывать, если вы хотите получить сильный и здоровый урожай.
Полив растений марихуаны — самое важное соображение.Однако это не так просто, как достать лейку и использовать ее, как букет роз. Выбирая график полива, вы должны регулировать его в зависимости от того, выращиваете ли вы в помещении или на открытом воздухе. Климатические соображения также имеют первостепенное значение, поскольку жара и влажность оказывают значительное влияние на растения каннабиса.
Наконец, вы должны рассмотреть вашу среду выращивания. Если у вас небольшой сад, подойдет ручной полив из традиционной лейки. Если у вас более обширная деятельность, стоит инвестировать в систему автоматического полива каннабиса.Это поможет снять стресс с дел. Когда все остальное не помогает, вес ваших горшков может служить полезным ориентиром для полива.
Если они громоздкие, это означает, что почва слишком влажная, и вам следует подождать несколько дней. Если они слишком светлые, пора немедленно полить.